Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Лекции.docx
Скачиваний:
30
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
3 Мб
Скачать
☆

2.2.5.Физические факторы, влияющие на развитие клеточных культур.

На рост и развитие растительных тканей in vitro, а так же на синтез ими вторичных метаболитов большое влияние оказывают физические факторы - свет, температура, аэрация.

Свет. Большинство каллусных тканей могут расти в условиях слабого освещения или в темноте, так как их клетки лишены хлоропластов и не способны к фотосинтезу. Вместе с тем свет может выступать как фактор, обеспечивающий морфогенез и активирующий или подавляющий процессы синтеза вторичных метаболитов. Решающее значение могут иметь такие характеристики света как его мощность и длина волны. В качестве источника света обычно используют люминесцент­ные лампы дневного света. Так, в культурах чайного растения под действием света увеличивался биосинтез полифенолов. Напротив, в культуре клеток Scopolia parviflora свет подавлял образование алкалоидов. Кроме интенсивности освещенности на культуру ткани и ее физиологические особенно­сти влияет качество света, т.е. длина световой волны. Так, более 20 флавонов и флавоноловых гликозидов образуется в культурах клеток петрушки после освеще­ния ее непрерывным люминесцентным светом «холодный белый». Вместе с тем синтез флавоновых гликозидов активируется при по­следовательном облучении ультрафиолетовым светом, а затем све­том, лежащим в области «красный - длинноволновый красный». Такая зависимость биосинтеза тех или иных соединений от длины волны может быть объяснена тем, что некоторые химические реакции, протекающие в клетках являются фотоиндуцируемыми, т.е. происходят только после того как с поглощенным светом они получают вполне определенное количество энергии.

Температура. Для большинства каллусных культур оптимальна температура 26 "С. В то же время каллусы и культуры клеток диоскореи дельтовидной хорошо растут даже при температуре 32°С. В отличие от роста культур клеток и тканей, индукция их морфоге­неза требует более низких температур (18 - 20°С). Влияние тем­пературы на метаболизм клеток in vitro изучено слабо. Есть дан­ные, что в каллусных культурах максимальное образование алка­лоидов наблюдалось при температуре 25°С, а при повышении тем­пературы резко снижалось. В суспензионных культурах клеток Ipomoea содержание жирных кислот значительно увеличивалось, если их выращивали при субоптимальных температурах роста (15°С). Поэтому при выращивании культуры in vitro необходимо тща­тельно изучать влияние всех абиотических факторов, в том числе температурного, на рост и метаболизм клеток.

Аэрация. Для выращивания суспензионных культур большое значение имеет аэрация. Особенно важно снабжение воздухом куль­тивируемых клеток в больших объемах ферментеров.

При сравнении разных типов ферментеров было показано, что синтез вторичных метаболитов в суспензионной культуре был наи­большим при подаче воздуха снизу. При выращивании клеток в малых объемах (в колбах) нормальная аэрация достигается при постоянном перемешивании суспензии.

2.2.6. Химические факторы, влияющие на синтез вторичных метаболитов.

Образование вторичных продуктов в культу­ре ткани растения может резко возрастать под влиянием некоторых стрессо­вых факторов (наличия веществ - продуктов жизнедеятельности определенных микроорганизмов, токсичных ионов тяжелых металлов, осмотического шока и т.д.).

Вторичные продукты некоторых растений, и прежде всего алкалоиды, являются фитоалексинами, т.е. их синтез в растительной клетке происходит в ответ на наличие или воздействие продуктов жизнедеятельности патогенных микроорганизмов. Таким образом растение защищает себя от фитопатогенов. Поэтому при добавлении к культуре ткани элиситоров (гомогенат из грибного мицелия или какие-либо другие продукты жиз­недеятельности микроорганизмов, паразитирующих на этих растениях в природе) возрастает интенсивность синте­за некоторых ценных веществ.

Так культура ткани Cephalotaxus harringtonia, продуцировавшая в небольших количествах цефалотоксин и противоопухолевый алка­лоид гомохаррингтонин, при добавлении к ней автоклавированных конидий гриба Verticillium dabiae в течение 6-8 дней значи­тельно увеличивала содержание этих алкалоидов.

Клетки Catharanthus roseus после обработки в течение 18 ча­сов гомогенатом гриба Pythium aphanidermatum (5%) увеличили биосинтез катарантина (до 0,01% от массы сухой ткани) в фермен­тере вместимостью 7,5 л. Усиление образования катарантина происходило в течение 1-2 дней после обработки элиситором и глав­ным образом в клетках, закончивших рост.

Биосинтез бензофенантридиновых алкалоидов в суспензионной культуре Eschscholtzia californica был индуцирован после обра­ботки ее элиситором, приготовленным из дрожжевого экстракта.

Институт биотехнологии (Канада, г.Саcкачеван) с целью умень­шения себестоимости конечного продукта предложил промышленный способ получения сангвинарина из клеточных культур мака путем элиситации продуцентов алкалоида грибным гомогенатом из Pythium aphanidermatum.

Кроме элиситоров грибного и микробного происхождения биосин­тез вторичных продуктов могут стимулировать химические вещества. Так, клетки Lithospermum erythrorhizon после переноса в продук­ционную среду, содержащую в 30 раз больше CuS04, чем ростовая среда, резко усилили синтез красителя шиконина. По-видимому, высокая концентрация СuSO4 вызвала стресс, что индуцировало усиленное об­разование шиконина. Было показано, что накопление изофлавоновых гликозидов в суспензионных культурах Vigna angularis стимулируется обработкой ее ванадатом натрия. Установлено, что сульфат ванадия способствовал увеличению почти в 2 раза содержания индольных алкалоидов аймалицина и катарантина в культивируемых клетках Catharanthus roseus. В настоящее время не известен ни механизм воздействия VaS04 на синтез вторичных продуктов, ни место его аккумуляции. Тем не менее, обработка клеток солями ванадия способствовала сокращению периода роста, увеличению выхода индольных алкалоидов и в отличие от грибных элиситоров не требовала выращивания грибов и получения из них элиситора. Этот способ может быть с успехом использован для получения ценных продуктов жизне­деятельности растительных клеток.