Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Рабочая тетрадь.docx
Скачиваний:
1
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
13 Мб
Скачать
☆

Раздел 3. Физиология крови

Рекомендации к технике взятия крови

Исследование крови у человека производится в условиях, полностью удовлетворяющих всем требованиям к лабораторно – диагностическим работам (чистота, асептика). Необходимо помнить о возможности занесения инфекции при взятии крови, о возможности перенесения заболевания от одного человека к другому. Каждая пипетка и игла для укола пальца и прочие лабораторные принадлежности предназначены для исследования только одного человека. Перед работой все участники занятий должны иметь коротко отстриженные ногти и тщательно вымытые руки. Обязательно использование стерильных перчаток.

Общий анализ крови проводится на капиллярной крови. Забор крови проводят утром, натощак, так как в процессе пищеварения происходят перераспределительные реакции в системе кровообращения, что сопровождается относительными изменениями в количестве форменных элементов крови. Для исследования кровь берут обычно из четвертого пальца нерабочей руки (этот палец имеет самостоятельное синовиальное влагалище, что исключает возможность распространения инфекций).

Кожу пальца тщательно протирают ватным шариком, смоченным спиртом, делают укол стерильным скарификатором до упора. Первую выступившую каплю крови вытирают, а из следующих капель, выступающих из места укола при легком надавливании, быстро набирают необходимое количество крови.

Биохимические анализы крови делаются на плазме крови, для чего в пробирку для центрифугирования заранее помещают антикоагулянты (щавелевокислый калий или натрий, лимоннокислый натрий), тщательно перемешивают с кровью и центрифугируют.

Некоторые биохимические анализы (определение протромбинового индекса и количества сывороточного железа) проводятся на сыворотке крови. Сыворотка – это плазма, лишенная фибриногена. Количественный состав и морфология клеток крови у человека в норме характеризуется достаточно высокой стабильностью, которая связана с постоянством действия регуляторных механизмов, направленных на поддержание гомеостаза. Поэтому изучение различных изменений в системе крови при заболеваниях имеет важное диагностическое значение.

Общий клинический анализ крови.

Анализ крови является одним из самых распространенных лабораторных исследований. В медицинской практике наибольшее распространение имеет общий клинический анализ, включающий исследования концентрации гемоглобина, подсчет числа эритроцитов, вычисление цветового показателя крови, подсчет числа лейкоцитов, исследование соотношения различных форм лейкоцитов и определение СОЭ - скорости оседания эритроцитов (Табл.4). Расширенная гемограмма включает также подсчет числа тромбоцитов и ретикулоцитов.

Таблица 4. Общий анализ крови

показатель

пол

Эритро-

циты

Гемо-

глобин

ЦПК

Тромбо-

циты

Лейко-

циты

СОЭ

Гемато-

крит

мужчины

4.5-5.5

х1012/л

130-160г/л

0.85-

1.15

180-320

х109/л

4.0-9.0

х109/л

1-10

мм/ч

40-48%

женщины

3.7-4.7

х1012/л

120 -150г/л

0.85-

1.15

180-320

х109/л

4.0-9.0

х109/л

2-15

мм/ч

36-42%

Лабораторная работа № 3.1. Основные гематологические показатели

Цель работы: изучить состав и общие свойства крови

Оборудование: таблицы с основными количественными показателями крови.

ХОД РАБОТЫ

1. Рассмотрите основные количественные показатели, характеризующие кровь по табл. 5

Таблица 5 - Показатели физико-химических свойств крови

Свойства крови

Содержание

Особенности

1. Объем крови

6-8% от массы тела или 4-6 л

Повышение объема крови называют гиперволемией, понижение – гиповолемией.

2. Цвет крови:

артериальная

венозная

алая

Содержит больше кислорода

темно-вишневая

Содержит больше углекислого газа

3. Вязкость крови

Цельной крови – 5 условных единиц.

Плазмы –1,7-2,2 у. ед,

Зависит от содержания в крови форменных элементов и белков.

4.Относительная плотность крови

Всей крови -1,050-1,060

Зависит от количества эритроцитов.

Плазмы – 1,025-1,034

Определяется концентрацией белков.

Эритроцитов – 1,090

5.Осмотическое давление

6,6-7,6 атмосфер или 5016-5776 мм рт.ст.

Определяется концентрацией растворенных в крови низкомолекулярных соединений – в основном солей хлористого натрия (60%) или калия, бикарбоната натрия и т.д.

6.Онкотическое давление

0,03-0,04 атмосферы или 25-30 мм рт.ст.

Определяется белками плазмы (в основном альбуминами)

7.Кислотно-щелочное равновесие (рН)

7,36-7,4 единицы

Реакция крови слабощелочная

Поддерживается буферными системами. Важнейшая из них гемоглобиновая.

8. Температура крови

В пределах 37-400С

Зависит от интенсивности обмена веществ органа, от которого оттекает кровь.

2. Изучите состав и белковые фракции плазмы крови по таблице 6 и 7.

Таблица 6: Состав плазмы крови

Плазма крови

Вода

90 – 92%

Сухой остаток

8,0 – 10%

Минеральные вещества

0,9%

Общий белок

7 -8%

Альбумины

4,5%

Глобулины

2,0 – 3,5%

Фибриноген

0,2 – 0,4%

Таблица 7 - Белковые фракции плазмы крови человека

Белковая фракция

Концентрация

в плазме

Физиологическое значение

Место образования

Молекулярная

масса

Альбумин

38,0-50,0 г/л

Поддержание онкотического давления. Транспорт тироксина, стероидных гормонов, жирных кислот, билирубина, гема, витаминов гр. А, В, С. Резерв белков для синтеза аминокислот

Печень

Небольшая, около 70 000

а1-Глобулины

1,4-3,0 г/л

Транспорт фосфолипидов, холестерина, витамина D, триглицеридов.

Печень, костный мозг,

селезенка, лимфоузлы

Крупномоле

кулярные

450 000

а2-Глобулины

5,6-9,1 г/л

Транспорт углеводов

β-Глобулины

5,4-9,1 г/л

Транспорт липидов в составе липопротеинов, транспорт железа, участие в свертывании крови

-Глобулины

9,1-14,7 г/л

Антитела, иммуноглобулины

Фибриноген

2,0-4,0 г/л

Образование тромба

Печень

340 000

3. Изучите основные гематологические показатели по табл. 8

Таблица 8 - Сводная характеристика основных показателей крови

Показатели

Пол

Традиционно сложившаяся система

Гемоглобин

М

13,0 – 16,0 г% или 130,0 - 160,0 г/л

Ж

12,0 – 15,0 г% или 120,0 - 150,0 г/л

Эритроциты

М

4,5 – 5,5 млн в 1 мкл

Ж

3,7 – 4,7 млн в 1 мкл

Тромбоциты

180,0 – 320,0 тыс. в 1 мкл

Лейкоциты

4,0 – 9,0 тыс в 1 мкл

Нейтрофилы палочкоядерные

40 – 300 в 1 мкл

Нейтрофилы сегментоядерные

47 – 72% или 2000 – 5500 в 1 мкл

Эозинофилы

0,5 – 5% или 20-300 в 1 мкл

Базофилы

0 – 1% или 0 – 65 в 1 мкл

Лимфоциты

1200 – 3000 в 1 мкл

Моноциты

3 – 11% или 90 – 600 в 1 мкл

Гематокритное число

Дети

35 – 40%

М

40 – 48%

Ж

36 – 42%

СОЭ

М

1 – 10 мм/ч

Ж

2 – 15 мм/ч

Объем циркулирующей крови

1/13 массы тела (60,5 - 84,7 мл/кг)

Объем циркулирующей плазмы

37 - 48 мл/кг

РН:

артериальной крови

венозной крови

внутри клеток

рН 7,36 – 7,44

рН 7,32 – 7,42

рН 7,2

Осмотическое давление крови

7,6 – 8,1 атм

Онкотическое давление

25 мм рт. ст.

Оформление протокола:

1. Перенесите в тетрадь данные таблиц №№ 3-8.

Контрольные вопросы для самостоятельного изучения

1. Система крови.

2. Состав и функции крови.

3. Состав плазмы. Белки плазмы: виды, количество, функции.

4. Основные этапы кроветворения

5. Характеристика основных гомеостатических показателей крови: объем циркулирующей крови, вязкость, онкотическое давление, осмотическое давление (характеристика и механизмы регуляции)

6. рН крови, роль буферных систем крови (гемоглобиновая, белковая, карбонатная, фосфатная) в его поддержании.

7. Становление гомеостатических реакций организма в онтогенезе.

Лабораторная работа № 3.2. Буферные системы крови

Цель работы – Наглядно убедиться в буферных свойствах сыворотки крови.

Оборудование: 4 стаканчика, сыворотка крови, разведенная в 10 раз, 0.01 N раствор NaOH, 0.1 N раствор НСl, дистиллированная вода, индикаторы (метилоранж, фенолфталеин).

Ход работы:

1.Для наблюдения буферных свойств крови берут два стаканчика: один с сывороткой крови (5мл), другой – с дистиллированной водой (5мл).

2.Прибавляют в оба стакана по 2 капли метилоранжа и титруют, считая капли, 0.1 N раствором соляной кислоты до появления неисчезающего при взбалтывании красного окрашивания. Титрование необходимо начинать с воды, которая обладает буферными свойствами и служит для контроля. (Для простоты отсчет титрования ведут в каплях).

3.Берут два других стакана и снова наливают в один – 5мл сыворотки крови, а в другой – 5 мл дистиллированной воды.

4.Прибавляют в каждый стаканчик по 2 капли фенолфталеина и, считая капли, титруют 0.01 N раствором едкого натра до неисчезающего в течение минуты слабого фиолетового окрашивания. Для более точного сравнения нужно поставить оба стаканчика рядом на белую бумагу.

Оформление протокола:

1.Записать полученные результаты в таблицу 9

Таблица 9

Исследуемая жидкость

Индикатор

Тирующий раствор

Количество

титрующего раствора

Результат

вода

метилоранж

Соляная кислота

2 капли

Сыворотка крови

метилоранж

Соляная кислота

2 капли

вода

фенолфталеин

Едкий натр

2 капли

Сыворотка крови

фенолфталеин

Едкий натр

2 капли

Сделать выводы по результатам проведенного исследования, ответить на вопросы:

1.Как объяснить, что на титрование сыворотки крови идет больше кислоты (НСl) и щелочи (NaOH), чем для воды?

2. Что называется щелочным резервом крови?

3.Во сколько раз больше нужно прибавить соляной кислоты к неразведенной сыворотке крови, чем к воде, чтобы сделать реакцию кислой (по метилоранжу)?

4. Во сколько раз больше нужно прибавить едкого натра к неразведенной сыворотке крови, чем к воде, чтобы сделать реакцию щелочной (по фенолфталеину)?

5.Как можно объяснить то, что кровь способна нейтрализовать кислоты в большей степени, чем щелочи?

6. Какую роль играют легкие и почки в нормализации рН крови?

7. Что называется алкалозом и ацидозом.

Лабораторная работа 3.3. Расчет осмотического и онкотического давления в биологических жидкостях.

Оформление протокола:

1.Решить задачи и сделать выводы:

Задача №1– Осмотическое давление белков плазмы равно 25 мм.рт.ст. Выразите эту величину в атмосферах. Чему равна осмотическая концентрация этого раствора в мосм? Какая часть общей осмолярности крови обеспечивается белками (в %)?

Задача №2 – Концентрация глюкозы в крови -6.6мосм/л. Какая часть общей осмолярности крови зависит от содержания в ней глюкозы (в%)?

Задача №3 – Концентрация натрия в крови равна 145 ммоль/л. Изотонический коэффициент хлористого натрия 1.8. Какая часть общей осмолярности крови обеспечивается за счет хлорида натрия (в %)?

Выводы: Указать, какое осмотически активное вещество играет главную роль в формировании осмолярности крови. Дать определение понятиям: «осмотическое давление» и «осмотическая концентрация». Написать, в каких единицах измеряются эти величины.

Вопросы для самоконтроля:

1.Электролитный состав плазмы.

2.Понятие об осмолярности плазмы.

3.Какие вещества создают осмотическое давление и каково его значение?

4. Понятие об изо-, гипо- и гипертонических растворах.

5. Какие вещества создают онкотическое давление и каково его значение?

6.Количество белков в раннем онтогенезе.

Лабораторная работа № 3.4 Подсчет количества лейкоцитов в счетной камере Горяева

Цель работы: овладеть техникой подсчета лейкоцитов с помощью камеры Горяева

В норме количество лейкоцитов в 1 л крови колеблется в пределах 4х109/л – 9х109/л

Оборудование: микроскоп, камера Горяева, покровные стекла, смеситель для подсчета лейкоцитов, стерильный скарификатор, штатив, пробирки, палочка, пипетка, стакан с дистиллированной водой, уксусная кислота 3-5%, подкрашенная метиленовым синим, спирт, вата.

ХОД РАБОТЫ

1. В пробирку внесите 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты, подкрашенной метиленовым синим (уксусная кислота лизирует эритроциты, метиленовый синий окрашивает ядра лейкоцитов).

2. Взятие крови осуществляют с помощью смесителя для лейкоцитов. В смеситель набрать 0,02 мл капиллярной крови.

3. Рассмотрите камеру Горяева под микроскопом и накройте ее покровным стеклом так же, как и при подсчете эритроцитов.

4. Перед заполнением камеры пробирку с разведенной кровью тщательно встряхните.

5. Камеру заполняйте также как при подсчете эритроцитов.

6. Содержание в крови лейкоцитов в 600 раз меньшее, чем эритроцитов. Поэтому лейкоциты подсчитывают в 100 больших квадратах. Эти квадраты сгруппированы по четыре. Подсчет начинайте с левой верхней группировки, а затем продвигайте камеру последовательно от группировки к группировке. При подсчете лейкоцитов в каждом большом квадрате придерживайтесь правил, описанных для эритроцитов. Подсчитав число лейкоцитов во всех 100 квадратах, запишите результат, а затем произведите подсчет.

Рис. 15 - Сетка камеры Горяева

СПОСОБ 1.

Рассчитать концентрацию лейкоцитов по приведенной формуле:

Ах400х20

Х =-------------------

1600

где, Х – количество лейкоцитов в 1 мкл крови;

А – число лейкоцитов, сосчитанных в определенном количестве больших квадратов;

20 – степень разведения крови,

1600 – кол-во малых квадратов, в которых считались лейкоциты;

1/400 – объем малых квадратов.

СПОСОБ 2. Для определения количества лейкоцитов в 1 мкл крови, полученное число умножить на 50 (можно посчитать число лейкоцитов в 25 больших квадратах, а затем умножить на 200).

При определении количества лейкоцитов камерным методом неизбежна еще большая ошибка, чем при подсчете эритроцитов; в среднем она составляет +7%.

Более точным (ошибка не превышает обычно 2-3%) и совершенным является подсчет лейкоцитов с помощью электронных аппаратов.

Оформление протокола.

1. Произведите подсчет лейкоцитов в 1 мкл крови с помощью счетной камеры Горяева.

2. Занесите результаты собственных исследований в таблицу 15.

Таблица 10- Результаты собственных исследований

Клетки крови

Пол

Количество ед/л

Полученные значения

Норма

Лейкоциты

М

4,0 – 9,0 х10 9/л крови

Ж

4. Сделайте заключение о соответствии полученных результатов нормативным.

Лабораторная работа № 3.5. Исследование пищеварительного лейкоцитоза

Цель работы - овладеть техникой подсчета лейкоцитов и выяснить влияние еды с аппетитом на число лейкоцитов.

Оборудование:

Стерильные перчатки, скарификаторы, спирт, вата, камера Горяева. Объект исследования - человек.

Ход работы:

1.Подготовить для исследований 2 группы студентов (по 5 человек): в состоянии натощак и плотно позавтракавших.

2.Произвести забор капиллярной крови и посчитать число лейкоцитов в камере Горяева в каждой группе студентов.

Контрольные вопросы для самостоятельного изучения

1.Строение и функции лейкоцитов.

2.Основные виды лейкоцитов.

3.Понятие о лейкоцитарной формуле.

4.Агранулоциты и их функции.

5.Гранулоциты и их функции.

6.Лейкоцитозы и лейкопении.

7.Изменения количества лейкоцитов и особенности лейкоцитарной формулы

у детей.

  1. Развитие Т- и В- звеньев специфического иммунитета.

Лабораторная работа 3.6. Подсчет количества эритроцитов в крови (в счетной камере Горяева)

Цель работы- Овладеть техникой подсчета эритроцитов и усвоить их физиологические функции

Оборудование: микроскоп, смеситель, счетная камера Горяева, покровное стекло, спирт, вата, скарификатор, разводящая жидкость (3% раствор хлорида натрия).

ХОД РАБОТЫ

Поместить камеру Горяева под микроскоп и рассмотреть сетку.

I

Рис. 16 Подсчет эритроцитов в счетной камере Горяева

I-устройство камеры: 1-предметное стекло; 2-средний брусок; 3-боковые бруски; 4-предметное стекло.

II-порядок подсчета эритроцитов (обозначен стрелками).

III-сетка счетной камеры с эритроцитами при большом увеличении.

А-смеситель;

Б-схема счетной камеры: отшлифованное толстое плоское предметное стекло с тремя наклеенными площадками. Средняя из них расположена ниже боковых на 0,1 мм. На ней нанесена сетка. Над средней площадкой к боковым возвышениям предметного стекла притирают покровное стекло;

В- сетка камеры. Обычно пользуются камерой с двумя сетками, разграниченными глубокой поперечной канавкой. Сетка Горяева состоит из 225 больших квадратов (15х15). Большие квадраты, расчерченные вертикально и горизонтально на 16 малых квадратов, чередуются с квадратами, разделенными только вертикальными или горизонтальными линиями, и квадратами чистыми без линий. Большие квадраты, состоящие каждый из 16 малых, служат при счете ориентирами.

2. Слегка увлажнив дыханием покровное стекло, кладут его на боковые площадки счетной камеры и движением больших пальцев притирают его до появления цветных колец Ньютона. Пальцами можно нажимать только над боковыми площадками, так как при надавливании на середину покровного стекла, то есть непосредственно над сеткой, оно ломается.

3. Налить в пробирку 4 мл 3% раствора хлорида натрия.

4. Ватным тампоном протереть мякоть 4-го пальца левой руки и скарификатором проколоть палец, отступив от середины на 1-2 мм влево.

5. Первую каплю крови стереть сухим тампоном. Во вторую каплю погрузить кончик смесителя, держа его вертикально. Набрать 0,02 мл крови до метки. Выдуть кровь из смесителя в пробирку с раствором хлорида натрия и промыть его три раза дистиллированной водой.

6. Кровь тщательно перемешать с раствором, вращая пробирку между ладонями в течение 2-х минут.

7. Каплю разведенной крови внесите пипеткой или стеклянной палочкой под притертое покровное стекло камеры, держа конец пипетки или палочки около края покровного стекла. После заполнения камеру оставьте на 1-2 минуты в покое для оседания форменных элементов, затем приступайте к подсчету при малом увеличении микроскопа в затемненном поле зрения.

8. Эритроциты считайте в 5 больших квадратах сетки, разграфленных на 16 малых и расположенных по диагонали. Поскольку распределение клеток в камере может быть неравномерным, необходимо под микроскопом отыскать левый верхний разграфленный большой квадрат, подсчитайте количество находящихся в нем эритроцитов, затем по диагонали вниз и направо найдите следующий разграфленный квадрат и т.д.

9. Найденное в каждом квадрате число эритроцитов заносите в протокол опыта.

1 квадрат 2 квадрат 3 квадрат 4 квадрат 5 квадрат

10. Во избежание повторного подсчета одних им тех же эритроцитов руководствуйтесь следующим правилом: подсчитывайте все эритроциты, находящиеся внутри малого квадрата; на разграничительных линиях подсчитывают их только тогда, когда они большей своей половиной заходят внутрь квадрата. Клетки, пересеченные разграничительной линией пополам, подсчитывайте лишь на двух сторонах квадрата – левой и верхней; клетки, выходящие большей своей половиной за пределы разграничительных линий, совсем не считайте. Результаты подсчета эритроцитов в каждом из 5 больших квадратов записывайте отдельно и суммируйте

11. Определите количество эритроцитов в 1 мкл цельной крови. Для этого полученное число эритроцитов (Э) делим на 80 (в 1 большом квадрате находится 16 маленьких: 5х16=80). Объем пространства над одним маленьким квадратом равен 1/4000 мм3. Умножая полученное число на 4000, получаем количество эритроцитов в 1 мм3 разведенной крови; умножая на 200 (кратность разведения), получаем количество эритроцитов в 1 мм3 цельной крови. Итоговая формула для исчисления следующая:

Э х 4000 х 200

Число эритроцитов в 1 мкл = ―――――――

80

где Э – найденная сумма эритроцитов в 5 больших квадратах (80 маленьких) квадратах.

Для получения боле точного результата произведите подсчет в двух сетках и используйте для подсчета средний арифметический результат.

Оформление протокола

1. Произведите подсчет эритроцитов, согласно инструкции, в 1 мкл крови.

2. Зарисуйте камеру Горяева.

3. Занесите результаты собственных исследований в таблицу 11.

Таблица 11 - Результаты собственных исследований

Клетки крови

Пол

Количество ед/мкл

Полученные значения

Норма

Эритроциты

М

4,0-5,0 млн. в 1 мкл крови

Ж

3,7-4,7 млн. в 1 мкл крови

4. Сделайте заключение о соответствии полученных результатов нормативным.

Контрольные вопросы для самостоятельного изучения

1.Особенности строения эритроцитов.

2.Физиологические функции эритроцитов.

3.Устройство счетной камеры Горяева.

4.Методика подсчета эритроцитов.

5.Нормативная концентрация эритроцитов у мужчин и женщин, причины понижения и повышения.

6.Автоматизированные методы подсчета эритроцитов.

7.Изменения количества эритроцитов у детей. Физиологическая желтуха.

Автоматизированные методы подсчета форменных элементов крови:

1.Фототметрический метод широко используется в современных лабораториях. Основан на измерении степени погашения света определенных длин волн взвесью эритроцитов в приборе фотоэлектроколориметре (ФЭК – 1). Процент задержанного света прямо пропорционален числу эритроцитов. Снимают показания прибора и определяют количество эритроцитов по специальной таблице.

2. Электронно – автоматический метод. В основе лежат два принципа:

-Импульсивный принцип – основан на разнице электропроводности частиц крови и жидкости, используемой для разбавления («Целлоскоп» и «Кальтер»). Эритроциты, взвешенные в изотоническом растворе хлорида натрия, всасываются в специальный капилляр с платиновыми электродами. Скачкообразные повышения сопротивления, возникающие при прохождении частиц крови через капилляр, вызывают электрические импульсы, амплитуда которых пропорциональна количеству частиц.

- электронно – автоматический метод. Подсчет лейкоцитов в современных счетчиках частиц производят по тому же принципу, что и эритроцитов. Предварительно кровь размешивают и смешивают с каким –либо лизирующим эритроциты реактивом. В автоанализаторе «Техникон» в качестве такового применяют раствор уксусной кислоты, а в аппаратах «Кальтер» и «Целлоскоп» - сапонин и сапоглобин.

Лабораторная работа № 3.7. Определение скорости оседания эритроцитов

Таблица 12 - Нормативная величина СОЭ

Новорожденные

Мужчины и дети старше 1 года

Женщины

Беременные женщины

Пожилые обоего пола

1-2 мм/ч

1-10 мм/ч

2-15 мм/ч

50-60 мм/ч

15-20 мм/ч

Цель работы - Определить скорость оседания эритроцитов у человека методом Панченкова

Оборудование: прибор Панченкова, лимоннокислый натрий, скарификатор, донорская кровь или образцы крови.

ХОД РАБОТЫ

Прибор Панченкова представляет собой штатив, в котором строго в вертикальном положении закреплены специальные капилляры. Определение производится в специальных градуированных капиллярных пипетках, имеющих просвет 1 мм и длину 100 мм. Они градуированы в миллиметрах (мм). Метка «0» находится на расстоянии 100 мм от нижнего конца; метка «К» (кровь) располагается на уровне «0», метка «Р» (реактив) – на уровне 50 мм (рис. 17).

Рис. 17 Прибор Панченкова

а – общий вид; б) – капилляр с метками; К – кровь; Р - реактив

1. Капилляр предварительно промыть 3,7% раствором цитрата натрия. Затем набрать цитрат натрия до метки «Р» и выдуть его на часовое стекло.

2. В тот же капилляр двукратно набрать кровь до метки «К»). Количество цитрата и крови может быть разное – 25 мкл цитрата и 100 мкл крови, 50 мкл цитрата и 200 мкл крови, но соотношение их должно быть обязательно 1:4.

3. Смешать обе порции крови с цитратом на часовом стекле. Смесь набрать в капиллярную пипетку до метки «0».

4. Капилляр с цитратной кровью поставьте в штатив вертикально между двумя резиновыми прокладками и оставьте на 1 час. Через час определите величину оседания по столбику плазмы над осевшими эритроцитами: деление капиллярной пипетки, соответствующее границе плазмы и эритроцитов, запишите как величину СОЭ, выраженную в мм/ч.

5. Важно поддерживать определенную температуру в помещении – 18-220С (при более низкой температуре оседание замедляется, при более высокой ускоряется).

Оформление протокола

1.Занесите данные исследования в таблицу 13.

Таблица 13 - Результаты собственных исследований

Пол

СОЭ, мм/ч

Полученное значение

Нормативное значение

Мужчины

1-10 мм/ч

Женщины

2-15 мм/ч

2.Сравните полученные результаты с нормативными.

3.Сделайте вывод.

Контрольные вопросы для самостоятельного изучения

1. Суспензионные свойства крови.

2. Что такое СОЭ? Нормативные показатели СОЭ у мужчин и женщин.

3. Какие факторы оказывают влияние на СОЭ?

4. Причины повышения СОЭ.

5. Причины понижения СОЭ.

6. Какова роль вязкости крови в реакциях оседания эритроцитов

7. Каково влияние количества форменных элементов крови на величину СОЭ?

8. Какой реактив и с какой целью используют для определения СОЭ

9. Особенности СОЭ у детей.

Лабораторная работа 3.8. Изучение различных видов гемолиза

Оборудование: штатив, восковой карандаш, 5 пробирок, физиологический раствор, дистиллированная вода, 5% раствор аммиака, 0.1. % раствор НСl и цитратная кровь любого животного.