- •Шаронова н.Л., Пахомова в.М., Бунтукова е.К. Экология почвенной микробиоты и диагностика почв
- •Содержание
- •Глава 5. Влияние сельскохозяйственного использования почв на почвенную микробиоту 107
- •Глава 6. Влияние антропогенной деградации биоценозов на почвенную микробиоту 167
- •Введение
- •Глава 1. Общие представления о почвенной микробиоте
- •Почвенные водоросли
- •Почвенные животные
- •Простейшие
- •Коловратки
- •Нематоды
- •Тихоходки
- •Членистоногие
- •Почвенные грибы
- •Прокариоты
- •Цианобактерии
- •Протеобактерии
- •Спирохеты
- •Цитофаги
- •Грамположительные бактерии
- •Микоплазмы
- •Архебактерии
- •Глава 2. Специфика почвы как среды обитания микроорганизмов
- •Твердая фаза почвы
- •Жидкая фаза почвы
- •Газовая фаза почвы
- •Концентрация ионов водорода
- •Окислительно-восстановительные условия
- •Температура
- •Глава 3. Основные принципы биологической индикации и диагностики почв
- •Ботаническая и зоологическая биоиндикация и диагностика почв
- •Почвенно-альгологическая индикация
- •Микробиологическая диагностика и биологическая активность почв
- •Биологическая индикация загрязнения почвенной среды и самоочищения почв
- •Глава 4. Влияние промышленного загрязнения на почвенную микробиоту
- •Загрязнение тяжелыми металлами
- •Концепция предельно допустимых концентраций (пдк) тяжелых металлов в почве
- •Влияние тяжелых металлов на микроорганизмы в почве
- •Микробиологическое нормирование загрязнения почв тяжелыми металлами
- •Радиоактивное загрязнение
- •Загрязнение нефтью и нефтепродуктами
- •Влияние углеводородного загрязнения почв на показатели комплекса микромицетов
- •Влияние загрязнения углеводородами на водоросли
- •Биодеградация нефти в почве
- •Воздействие кислых дождей
- •Глава 5. Влияние сельскохозяйственного использования почв на почвенную микробиоту
- •Микробиологические аспекты загрязнения почв пестицидами
- •Влияние пестицидов на почвенные микроорганизмы
- •Микробиологические подходы к оценке действия пестицидов
- •Детоксикация пестицидов в почве
- •Влияние внесения минеральных удобрений
- •Влияние минеральных удобрений на общую численность и биомассу микроорганизмов в почве
- •Влияние минеральных удобрений на численность различных физиологических групп микроорганизмов и активность процессов азотфиксации и денитрификации в почве
- •Минеральные удобрения как фактор воздействия на видовой состав почвенных микроорганизмов и устойчивость микробных систем почв к удобрениям
- •Оценка устойчивости микробных систем различных почв к воздействию минеральных удобрений
- •Влияние длительного применения минеральных удобрений на микробную систему почв
- •Влияние эрозионных процессов
- •Глава 6. Влияние антропогенной деградации биоценозов на почвенную микробиоту
- •Влияние рекреационной и пастбищной дегрессии почв на микроорганизмы
- •Влияние рубки леса на микроорганизмы
- •Лабораторный практикум работа 1. Определение численности микроорганизмов различных физиологических групп в почве
- •1. Приготовление плотных и жидких питательных сред для выявления разных физиологических групп микроорганизмов
- •Ход работы
- •2. Выявление групп микроорганизмов методом обрастания комочков почвы
- •3. Взятие средней почвенной пробы и подготовка образца к микробиологическому анализу
- •4. Приготовление почвенной суспензии
- •Учет различных групп микроорганизмов
- •Материалы и оборудование
- •Работа 2. Исследование реакции микроорганизмов на факторы внешней среды
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 3. Исследование микробиоценозов почвы и определение ее биологической активности
- •1. Исследование микробоценозов почвы методом обрастания стекол по Холодному - Росси Ход работы
- •2. Определение биологической активности почвы по интенсивности разложения полотна методом Мишустина – Вострова - Петровой Ход работы
- •3. Определение биологической активности почвы по интенсивности разложения целлофановых мембран методом Гузева – Иванова - Левина Ход работы
- •4. Определение изменений в инициированном микробном сообществе Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 4. Выявление ризосферной и корневой (ризопланы) микрофлоры методом теппер
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 5. Исследование свободноживущих и симбиотических азотфиксирующих бактерий
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 6. Исследование азотфиксирующей активности ацетиленовым методом в лабораторных условиях
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 7. Определение мобилизуемых запасов фосфора и калия в почве по методу буткевича
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 8. Определение токсичности водных экстрактов почвы и индивидуальных соединений с использованием в качестве тест-объекта бактерий pseudomonas putida
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 9. Определение общей микробной биомассы в почве
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 10. Определение ферментативной активности почвы
- •1. Газометрический метод определения активности каталазы в почве
- •Ход работы
- •Ход работы
- •3. Определение активности инвертазы в почве
- •Ход работы
- •2. Определение активности дегидрогеназы в почве
- •4. Определение активности уреазы в почве
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Приложение
- •Глоссарий
- •Список использованной и рекомендованной литературы
Материалы и оборудование
Газовый хроматограф с пламенно-ионизацинным детектором. Питание к хроматографу: азот сжатый (или аргон, или гелий), водород (в баллонах или генератор водорода типа СТС-2), воздух сжатый (или компрессор). Шприцы медицинские на 1,5, 10 и 15 мл с резиновым уплотнителем, кольцом на поршне (типа «Рекорд»). Флаконы «пенициллиновые» на 25, 50, 100 мл. Этилен в газометре, ацетилен в баллоне или газометре.
Работа 7. Определение мобилизуемых запасов фосфора и калия в почве по методу буткевича
Цель опыта - определить мобилизуемые запасы фосфора и калия в разных почвах, используя гриб как индикатор фосфора или калия в среде. При отсутствии подвижных фосфора или калия в субстрате гриб развиваться не сможет, однако если вместо недостающих элементов в среду добавить почву, содержащую эти элементы, то гриб будет развиваться и его клеточная масса отразит содержание фосфора или калия. На этом принципе и основан метод Буткевича.
Ход работы
Для определения мобилизуемых запасов фосфора или калия в почве с помощью гриба Aspergillus niger необходимо подготовить основную питательную среду без фосфора и калия следующего состава (в %): сахароза - 10,0; (NH4)2SО4 - 0,6; пептон - 0,1; MgSО4 - 0,05; FeSО4 - 0,001; ZnSО4 - 0,001; CuSО4 - 0,001; лимонная кислота - 1,0.
Благодаря наличию в среде лимонной кислоты она становится настолько кислой, что развитие в ней микроорганизмов помимо Aspergillus niger становится невозможным. В связи с этим используемая в опыте среда не стерилизуется.
В эрленмейеровские колбы емкостью 70-100 мл наливают по 30 мл питательной среды. Для определения доступных запасов фосфора в почве (в виде Р2О5) к среде в колбах добавляют 0,05% -ный K2SО4, для определения доступных запасов калия (в виде К2О) приливают 0,12%-ный NH4H2PО4.
В субстрат без фосфора вносят почву из расчета 1 г на каждые 6 мл, без калия -1 г на каждые 10 мл среды.
Среду в колбах заражают 1-2 каплями суспензии гриба Aspergillus niger или же иглой берут немного спор из культуры этого гриба на агаре и помещают в колбу с питательным субстратом. Для обоих случаев следует поставить контрольные колбы без почвы. Повторность опыта 2-4-кратная. После заражения колбы ставят в термостат с температурой 28-300 на 6-7 сут.
Стеклянным крючком пленку гриба извлекают на часовое стекло и складывают ее вдвое так, чтобы споры оказались внутри складки. С поверхности пленки тщательно отмывают почвенные частицы и удаляют из нее свободную воду (пленку отжимают сначала газетной, а потом фильтровальной бумагой до исчезновения следов воды на бумаге).
Для определения абсолютно сухой массы в отжатой сырой пленке ее помещают в бюкс и сушат сначала при температуре 600, затем при 850 и 1050 до постоянного веса. Содержание абсолютно сухой массы можно установить путем вычисления, так как известно, что в сырой пленке гриба находится 80% воды и 20% абсолютно сухого вещества.
В абсолютно сухой пленке рассчитывают содержание фосфора или калия. По данным В. С. Буткевича, в 1 г ее находится 4 мг Р2О5 и 2 мг К2О. Полученное количество фосфора и калия приравнивают ко взятой навеске почвы (к 5 г почвы при определении фосфора и к 3 г - при определении калия) и пересчитывают содержание Р2О5 и К2О на 100 г почвы.
Пример расчета для определения доступных запасов фосфора в почве: допустим, что вес сырой пленки равен 0,4 г, тогда вес абсолютно сухой пленки составит
(0,4 г * 20%)/ 100% = 0,08 г
1 г абсолютно сухой пленки содержит 4 мг Р2О5, а 0,08 г абсолютно сухой пленки содержит Х мг Р2О5, отсюда
Х= (0,08 г·* 4 мг) / 1 г = 0,32 г Р2О5
Так как количество Р2О5 было взято грибом из 5 г почвы, то в 100 г будет содержаться
(0,32*100)/5 = 6,4 мг
Так же вычисляют содержание К20 на 100 г почвы.
Результаты определения доступных запасов фосфора в почве, как правило, получаются несколько завышенными, потому что гриб Aspergillus niger выделяет лимонную кислоту, высвобождающую фосфорную кислоту из труднорастворимых фосфатов. Однако эти результаты дают возможность агрономам ориентироваться в том, какие почвы больше нуждаются в фосфорных удобрениях и под какими культурами.
Более точные данные можно получить, используя культуру гриба Aspergillus niger при наличии образца «стандартной» почвы с известным содержанием доступных запасов фосфора или калия. Для этого пленку гриба выращивают в стандартной и исследуемой почвах. Затем путем сравнения веса сухих пленок, выросших на почве с известным содержанием фосфора или калия, с пленками (сухими), выросшими на исследуемой почве, рассчитывают количество этих элементов.
Пример. На стандартной почве, содержащей 6 мг Р2О5 в 100 г, выросла пленка весом 0,2 г, а на исследуемой - 0,15 г. Для определения количества Р2О5 в 100 г данной почвы составляется пропорция:
6 мг Р2О5 на 100 г почвы - 0,2 г,
Х мг Р2О5 на 100 г почвы - 0,15 г,
отсюда Х= (6*0,15)/ 0,02 =4,5 мг Р2О5 на 100 г исследуемой почвы.
