- •Шаронова н.Л., Пахомова в.М., Бунтукова е.К. Экология почвенной микробиоты и диагностика почв
- •Содержание
- •Глава 5. Влияние сельскохозяйственного использования почв на почвенную микробиоту 107
- •Глава 6. Влияние антропогенной деградации биоценозов на почвенную микробиоту 167
- •Введение
- •Глава 1. Общие представления о почвенной микробиоте
- •Почвенные водоросли
- •Почвенные животные
- •Простейшие
- •Коловратки
- •Нематоды
- •Тихоходки
- •Членистоногие
- •Почвенные грибы
- •Прокариоты
- •Цианобактерии
- •Протеобактерии
- •Спирохеты
- •Цитофаги
- •Грамположительные бактерии
- •Микоплазмы
- •Архебактерии
- •Глава 2. Специфика почвы как среды обитания микроорганизмов
- •Твердая фаза почвы
- •Жидкая фаза почвы
- •Газовая фаза почвы
- •Концентрация ионов водорода
- •Окислительно-восстановительные условия
- •Температура
- •Глава 3. Основные принципы биологической индикации и диагностики почв
- •Ботаническая и зоологическая биоиндикация и диагностика почв
- •Почвенно-альгологическая индикация
- •Микробиологическая диагностика и биологическая активность почв
- •Биологическая индикация загрязнения почвенной среды и самоочищения почв
- •Глава 4. Влияние промышленного загрязнения на почвенную микробиоту
- •Загрязнение тяжелыми металлами
- •Концепция предельно допустимых концентраций (пдк) тяжелых металлов в почве
- •Влияние тяжелых металлов на микроорганизмы в почве
- •Микробиологическое нормирование загрязнения почв тяжелыми металлами
- •Радиоактивное загрязнение
- •Загрязнение нефтью и нефтепродуктами
- •Влияние углеводородного загрязнения почв на показатели комплекса микромицетов
- •Влияние загрязнения углеводородами на водоросли
- •Биодеградация нефти в почве
- •Воздействие кислых дождей
- •Глава 5. Влияние сельскохозяйственного использования почв на почвенную микробиоту
- •Микробиологические аспекты загрязнения почв пестицидами
- •Влияние пестицидов на почвенные микроорганизмы
- •Микробиологические подходы к оценке действия пестицидов
- •Детоксикация пестицидов в почве
- •Влияние внесения минеральных удобрений
- •Влияние минеральных удобрений на общую численность и биомассу микроорганизмов в почве
- •Влияние минеральных удобрений на численность различных физиологических групп микроорганизмов и активность процессов азотфиксации и денитрификации в почве
- •Минеральные удобрения как фактор воздействия на видовой состав почвенных микроорганизмов и устойчивость микробных систем почв к удобрениям
- •Оценка устойчивости микробных систем различных почв к воздействию минеральных удобрений
- •Влияние длительного применения минеральных удобрений на микробную систему почв
- •Влияние эрозионных процессов
- •Глава 6. Влияние антропогенной деградации биоценозов на почвенную микробиоту
- •Влияние рекреационной и пастбищной дегрессии почв на микроорганизмы
- •Влияние рубки леса на микроорганизмы
- •Лабораторный практикум работа 1. Определение численности микроорганизмов различных физиологических групп в почве
- •1. Приготовление плотных и жидких питательных сред для выявления разных физиологических групп микроорганизмов
- •Ход работы
- •2. Выявление групп микроорганизмов методом обрастания комочков почвы
- •3. Взятие средней почвенной пробы и подготовка образца к микробиологическому анализу
- •4. Приготовление почвенной суспензии
- •Учет различных групп микроорганизмов
- •Материалы и оборудование
- •Работа 2. Исследование реакции микроорганизмов на факторы внешней среды
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 3. Исследование микробиоценозов почвы и определение ее биологической активности
- •1. Исследование микробоценозов почвы методом обрастания стекол по Холодному - Росси Ход работы
- •2. Определение биологической активности почвы по интенсивности разложения полотна методом Мишустина – Вострова - Петровой Ход работы
- •3. Определение биологической активности почвы по интенсивности разложения целлофановых мембран методом Гузева – Иванова - Левина Ход работы
- •4. Определение изменений в инициированном микробном сообществе Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 4. Выявление ризосферной и корневой (ризопланы) микрофлоры методом теппер
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 5. Исследование свободноживущих и симбиотических азотфиксирующих бактерий
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 6. Исследование азотфиксирующей активности ацетиленовым методом в лабораторных условиях
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 7. Определение мобилизуемых запасов фосфора и калия в почве по методу буткевича
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 8. Определение токсичности водных экстрактов почвы и индивидуальных соединений с использованием в качестве тест-объекта бактерий pseudomonas putida
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 9. Определение общей микробной биомассы в почве
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Работа 10. Определение ферментативной активности почвы
- •1. Газометрический метод определения активности каталазы в почве
- •Ход работы
- •Ход работы
- •3. Определение активности инвертазы в почве
- •Ход работы
- •2. Определение активности дегидрогеназы в почве
- •4. Определение активности уреазы в почве
- •Ход работы
- •Материалы и оборудование
- •Приложение
- •Глоссарий
- •Список использованной и рекомендованной литературы
4. Определение активности уреазы в почве
К ферментам, участвующим в превращении белковых веществ, относится уреаза. Образовавшийся в результате уреазной реакции аммиак служит источником питания растений. Уреаза катализирует распад мочевины на аммиак и углекислоту. Фермент обладает строгой специфичностью действия: расщепляет только мочевину и не действует на производные. Оптимум рН уреазы близок к 7,0, но может смещаться в зависимости от концентрации мочевины, от природы и концентрации применяемых буферов. В почве уреаза может действовать в сравнительно широком диапазоне рН.
Ход работы
К 2 г почвы добавляют 5 мл фосфатного буфера (рН 6,7) и 5 мл 10 %-ного раствора мочевины. После этого колбы тщательно встряхивают и инкубируют 3 часа при 30°С. После добавляют 7,5 мл КСl, перемешивают и центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин. Центрифугат сливают в пробирки. Далее по 1 мл центрифугата переносят в мерные колбы на 25 мл, добавляют в колбы воду (5–7 мл), тщательно перемешивают и снова добавляют небольшой объем воды, после чего вливают 1 мл раствора Неслера и 1 мл 50 %-ного раствора сегнетовой соли. Доводят до метки осторожным приливанием небольших объемов воды при тщательном перемешивании. Оптическую плотность измеряют при длине волны 480 нм в кюветах шириной 20 мм.
Активность уреазы выражается в миллиграммах NН3 на 1 г почвы за час и рассчитывается по формуле:
NH3 = (a −b) * p *10 / H, где
a — количество аммиака в пробе по графику, мг;
b — количество аммиака в контроле по графику, мг;
p — разведение;
H — навеска почвы, г.
Материалы и оборудование
Для определения каталазы:
1) реактивы: 30 %-ный раствор перекиси водорода, СаСО3.
2) оборудование: колба 100 мл, пинцет, стеклянный стакан, прибор для определения активности каталазы, секундомер.
Для определения дегидрогеназы:
1) реактивы: 0,1 М раствор глюкозы, 1%-ный раствор 2,3,5-трифенилтетразолия хлористого (ТТХ), трифенилформазан, СаСО3, этиловый спирт.
2) оборудование: фотоэлектрокалориметр, мерные колбы, пробирки, анаэростат.
Для определения инвертазы:
1) реактивы: 5 %-ный р-р сахарозы, ацетатный буфер (рН 4,7), толуол, раствор Фелинга (раствор а — 40 г сернокислой меди (CuSO4.5H2O) растворяют в дистиллированной воде и доводят до 1 л; раствор б — 200 г сегнетовой соли (C4H4O6KNa.4H2O) растворяют в дистиллированной воде, прибавляют 150 г КОН или NаОН и доводят до 1 л. Оба раствора фильтруют. Перед употреблением растворы а и б смешивают в соотношении 1:1), раствор окисного железа (86 г соли железоаммиачных квасцов (Fe2(NH4)SO4.2H2O), заливают 200 г конц. серной кислоты и доводят объем водой до 1 л), 0,1 н титрованный раствор KMnO4.
2) оборудование: мерные колбы на 50, 100 мл, колбы Бунзена, фильтр №4, водоструйный насос.
Для определения уреазы:
1) реактивы: фосфатный буфер (рН 6,7); 10 %-ный раствор мочевины; 1 н КСl; реактив Неслера; раствор сегнетовой соли (калий-натрий виннокислый: 50 г соли растворить в 100 мл дистиллированной воды); стандартный раствор: 0,1 мг NН3 в 1 мл воды.
2) оборудование: фотоэлектрокалориметр, центрифуга.
