- •Введение.
- •Тема 1. Предмет, краткая история и задачи санитарной микробиологии.
- •Тема 2. Экология Микроорганизмов.
- •Тема 3. Учение о санитарно – показательных микроорганизмах.
- •Тема 4. Принципы и методы санитарно – микробиологических исследований
- •Тема 5. Микробиология мяса, мясных продуктов, контроль производства мяса мясных продуктов.
- •Тема 6. Микробиология молока и молочных продуктов.
- •Микробиология молочных продуктов.
- •Продукты молочного брожения.
- •Тема 7. Микрофлора товарной рыбы и сырья для производства рыбных консервов.
- •Тема 8. Микробиология яиц и яичных продуктов.
- •Тема 9. Микрофлора пищевых продуктов.
- •Возбудители пищевых токсикоинфекций.
- •Тема 10. Микрофлора почвы.
- •Тема 11. Микрофлора воды.
- •Тема 12. Микрофлора воздуха.
- •Тема 13. Дезинфекция, дезинсекция и дератизация на мясо- и молоко- перерабатывающих предприятиях.
- •Гигиенические требования при провидении дезинфекции, стерилизации, дезинсекции и дератизации.
- •Лабораторные занятия по санитарной микробиологии.
- •Тема 1. Общие Правила отбора проб продуктов животного происхождения.
- •Тема 2. Бактериологическое исследование мяса сельскохозяйственных и промысловых животных.
- •Определение количества мафАнМ
- •Индикация кишечной палочки.
- •Индикация сальмонеллезной палочки.
- •Тема 3. Бактериологическое исследование мяса птицы.
- •Индикация бгкп в мясе птицы.
- •Индикация Сальмонелл.
- •Выявление золотистого стафилококка.
- •Тема 4. Бактериологическое исследование мясных консервов и сырья для изготовления колбас, фарша и других видов мясной продукции.
- •Правила отбора проб.
- •Подготовка к микробиологическому исследованию.
- •Определение промышленной стерильности.
- •Выявление ботулинического токсина в консервах.
- •Тема 5. Бактериологическое исследование колбасных изделий и продуктов из мяса.
- •Отбор, подготовка проб и проведение исследований.
- •Среды для индикации бактерий группы кишечных палочек.
- •Тема 6. Бактериологическое исследование и оценка качества яиц и яичных продуктов.
- •Бактериологическое исследование яичных продуктов.
- •Тема 7. Санитарно-микробиологическое исследование молока. Определение количества мафАнМ. Редуктазная проба. Коли-титр молока. Бактериологическое исследование молока.
- •Определение наличия ингибирующих веществ в молоке.
- •Определение эффективности пастеризации.
- •Тема 8. Изучение микрофлоры кисломолочных продуктов.
- •Технология производства кисломолочных продуктов.
- •Продукты молочного брожения.
- •Продукты комбинированного брожения.
- •Тема 9. Бактериологическая оценка качества свежей рыбы и морепродуктов. Контроль качества свежей, охлажденной, мороженной рыбы и морских беспозвоночных.
- •Определение количества мафАнМ.
- •Индикация бактерий группы кишечных палочек.
- •Индикация наличия золотистого стафилококка.
- •Определение наличия бактерий рода сальмонелла.
- •Индикация парагемолитического генома.
- •Тема 10. Санитарно-микробиологическое исследование воздуха.
- •Тема 11. Санитарно-микробиологическое исследование почвы.
- •Определение количества мафАнМ в 1 г. Почвы методом серийных разведений.
- •Определение коли-титра почвы методом бродильных проб с использованием среды Кесслера.
- •Тема 12. Санитарно-микробиологическое исследование воды. Определение коли-титра и коли-индекса воды.
- •Метод мембральных фильтров.
Индикация наличия золотистого стафилококка.
Метод основан на выявлении характерного роста бактерий на элективных средах, изучении морфологических свойств, наличии ферментов плазмокоагулазы и гемотоксина,
являющихся факторами патогенности золотистого стафилококка.
1 г продукта и 1 мл разведения (10–1) засевают в пробирку с 6–7 мл среды обогащения (солевого рыбопептонного бульона, содержащего 7% NaCl). При исследовании соленых продуктов (свыше 5%) дополнительно проводят посев в 1%"ный глюкозный РПБ. Посевы помещают в термостат при температуре +37_С на 24 ч. Из сред обогащения (солевого, глюкозного бульонов) проводят посев на элективные среды: желточно- или молочно-солевой агар или среду Байрд–Паркер. Посевы выдерживают при температуре +37_С в течение 24 ч. Из типичных для стафилококков колоний (на молочно" и желточно-солевом агаре с радужным венчиком вокруг колоний; на среде Байрд–Паркер — черные, блестящие с узким белым ободком, окруженные прозрачной зоной) готовят препараты, затем окрашивают по Граму, микроскопируют, отсеивают на скошенный агар в пробирках для получения чистой культуры и инкубируют при температуре +37_С в течение 24 ч. С суточной культурой ставят реакцию плазмокоагуляции.
Реакция плазмокоагуляции. В пробирку с 0,5 мл кроличьей плазмы, разведенной физраствором в соотношении 1 : 5 (1 мл плазмы + 4 мл физраствора), вносят петлю суточной культуры стафилококка. Для контроля одну пробирку с плазмой оставляют незасеянной. Пробирки помещают в термостат при температуре +37_С. Учет реакции плазмокоагуляции проводят через 2, 4 ч. Реакция считается положительной, если сгусток образовался в течение 24 ч.
Определение наличия бактерий рода сальмонелла.
Метод основан на способности бактерий рода сальмонелла расти на дифференциально-диагностических средах (см. вклейку, ил. II) и давать реакцию агглютинации со специфическими сальмонеллезными сыворотками.
Навесок продукта в количестве 25 г засевают в 100 мл среды обогащения (магниевую или селенитовый бульон). Посевы помещают на 18–20 ч в термостат при температуре +37_С.
На второй день исследования из сред обогащения делают высев в чашки Петри на плотные дифференциально-диагностические среды: висмут-сульфитный агар (ВСА), среду Плоскирева, Левина или Эндо. Перед посевом среду необходимо подсушить в термостате, чтобы выросли изолированные колонии.
Посевы на средах Эндо и Плоскирева термостатируют в течение 15–18 ч, на среде ВСА — 48 ч при температуре +37_С. На ВСА сальмонеллы образуют черные с металлическим блеском колонии, цвет питательной среды под колониями также черный. Исключение составляют S. paratyphi, S. choleraesuis и ряд других, растущих в виде мелких серовато-зеленых колоний с черным центром и без него. Кишечная палочка на ВСА образует бесцветные, зеленоватые или серые колонии или не дает роста.
На среде Эндо колонии сальмонелл бесцветные, бледно-розовые, выпуклые. На средах Плоскирева и Левина колонии прозрачные, голубоватые, бледные или нежно-розовые.
С дифференциально-диагностических сред отсевают несколько колоний на трехсахарный агар с мочевиной или в пробирки со средой Клиглера с мочевиной: посевы делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом в столбик, после этого выдерживают в термостате при температуре +37_С 24 ч. На этих средах учитывают способность культуры ферментировать глюкозу, лактозу и мочевину. Для сальмонелл характерно разложение глюкозы с образованием газа, лактозу и мочевину они не расщепляют. Свежая среда — трехсахарный агар с мочевиной, — имеет розовый цвет. Отсутствие изменения цвета скошенной поверхности после посева указывает на то, что лактоза и сахароза не разлагаются изучаемой культурой. Окрашивание столбика в желтый цвет, образование газа (разрывы в глубине агара) и сероводорода (почернение) указывают на рост бактерий из рода сальмонелл.
Желательно выросшую культуру со среды Клиглера или стрехсахарного агара отсеять на скошенный МПА, короткий пестрый ряд, включающий среды Гисса с лактозой, глюкозой, маннитом, сахарозой, мальтозой. Для определения индола и сероводорода посев делают на рыбо- или мясопептонный бульон, после чего над посевом между пробкой и стенкой пробирки закрепляют узкую полоску фильтровальной бумаги, смоченную уксуснокислым свинцом для определения сероводорода и раствором щавелевой кислоты для определения индола. Посевы термостатируют при температуре +37_С в течение 24 ч.
Таким образом, к сальмонеллам относятся бактерии, не разлагающие лактозу, сахарозу и мочевину, ферментирующие глюкозу, маннит и мальтозу с образованием газа, продуцирующие сероводород и не образующие индол.
Для окончательного заключения с выделенной культурой ставят РА на предметном стекле с поливалентной, О- и Н-агглютинирующими сальмонеллезными сыворотками. В случае положительной реакции агглютинации на предметном стекле делают окончательный вывод о присутствии в исследуемом продукте сальмонелл.
