- •Передмова
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Розділ 1 інструментальні методи аналізу в медицині
- •Розділ 2 правила роботи з приладами
- •2.1. Фотоелектроколориметри
- •2.1.2. Колориметр фотоелектричний концентраційний кфк-2мп
- •2.1.4. Фотометр аналітичний медичний мефан-8001
- •2.2. Правила проведення фотометрії та розрахунок результатів досліджень
- •2.3. Поляриметр
- •2.4. Рефрактометр ирф–22
- •2.5. Прилади для потенціометричного аналізу
- •2.5.2. Універсальний йономір эв–74
- •Контрольні питання до розділів 1 – 2
- •Розділ 3 методи вивчення білкового обміну
- •Визначення загального білка в сироватці крові й інших біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 1 Уніфікований метод визначення загального білка в сироватці крові. Біуретова реакція
- •Лабораторна робота № 2 Рефрактометричний метод визначення загального білка в сироватці крові
- •Лабораторна робота № 3 Визначення загального білка в сечі. Проба Гелера
- •Клініко-діагностичне значення визначення загального білка у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 4 Проби колоїдостійкості білків сироватки крові. Тимолова проба
- •Приклад побудови калібрувального графіка для визначення тимолової проби
- •Клініко-діагностичне значення тимолової проби
- •Лабораторна робота № 5 Визначення білкового спектру сироватки крові методом електрофорезу на папері
- •Приклад розрахунку білкових фракцій у відносних одиницях
- •Приклад розрахунку білкових фракцій в абсолютних одиницях
- •Клініко-діагностичне значення дослідження електрофореграм
- •Приклад опрацювання електрофореграм за допомогою комп'ютера
- •Контрольні питання до розділу 3
- •Розділ 4. Небілкові нітрогенвмісні (Азотисті) сполуки
- •Методи дослідження вмісту сечовини, креатину, креатиніну та сечової кислоти в біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 6 Визначення сечовини в сироватці крові та сечі за кольоровою реакцією з діацетилмонооксимом
- •Готування робочого реактиву
- •Клініко – діагностичне значення кількісного визначення сечовини у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 7 Визначення креатиніну в біологічних рідинах за кольоровою реакцією Яффе
- •Б) Хід визначення вмісту креатиніну в добовій сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження концентрації креатиніну у біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 8 Визначення сечової кислоти в сироватці крові за реакцією з фосфорно-вольфрамовим реактивом
- •Лабораторна робота № 9 Кількісне визначення сечової кислоти в сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження вмісту сечової кислоти у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 4
- •Розділ 5. Ферменти
- •Визначення активності α-амілази в біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 10 Визначення активності α–амілази зі стійким крохмальним субстратом. Метод Каравею
- •Лабораторна робота № 12 Визначення активності α-амілази в сироватці крові. Метод Кінга
- •Лабораторна робота № 13 Вплив рН середовища на активність ферментів
- •Лабораторна робота № 14 Вплив активаторів та інгібіторів на активність ферменту α-амілази
- •Лабораторна робота № 15 Вплив температури на активність
- •Готування розведеної слини
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності α-амілази у біологічних рідинах
- •Визначення амінотрансфераз у сироватці крові
- •Лабораторна робота № 16 Колориметричний метод визначення активності аспартатамінотрансферази у сироватці крові (за Райтманом – Френкелем)
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності амінотрансфераз у сироватці крові
- •Контрольні питання до розділу 5
- •Розділ 6. Методи вивчення вуглеводного обміну
- •Лабораторна робота № 17 Якісне визначення глюкози в біологічних рідинах. Реакція Тромера
- •Лабораторна робота № 18 Визначення глюкози в біологічних рідинах глюкозооксидазним (уніфікованим) методом
- •Лабораторна робота № 19 Кількісне визначення глюкози в сечі за кольоровою реакцією з о-толуїдиновим реактивом
- •Лабораторна робота № 20 Кількісне визначення глюкози в сечі поляриметричним методом
- •Клініко-діагностичне значення визначення глюкози в біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 6
- •Розділ 7. Обмін ліпідів
- •Біологічна роль ліпідів
- •Лабораторна робота №21 Якісна реакція на ацетон та ацетоацетатну кислоту
- •Лабораторна робота №22 Якісна реакція на ацетоацетатну кислоту. Реакція Герхарда
- •Лабораторна робота №23 Якісне виявлення ацетону у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота №24 Якісна реакція на β-оксимасляну кислоту
- •Клініко-діагностичне значення визначення кетонових тіл у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 7
- •Біохімічні показники для дорослих у нормі
- •Література
- •Безпальченко Віолета Михайлівна
- •Практикум Навчальний посібник для студентів вищих навчальних закладів
Лабораторна робота № 4 Проби колоїдостійкості білків сироватки крові. Тимолова проба
Мета: Дослідити взаємодію сироватки крові з тимолово-вероналовим реактивом.
Теоретична частина
Тимолова проба, яка запропонована у 1944 році Маклаганом, заснована на визначенні ступеня помутніння суміші при взаємодії сироватки крові з насиченим розчином тимолу у вероналовому буфері.
Хімічна сутність тимолової проби остаточно не з'ясована. Багато авторів гадають, що проба стає позитивною при зменшенні вмісту альбумінів і збільшенні рівню β-, γ-глобулінів і пов'язаних із β-глобулінами ліпідів (ліпопротеїдів) у сироватці крові. Вважають, що помутніння суміші обумовлено взаємодією колоїдних часток тимолу і деяких крупнодисперсних білків – γ-глобулінів і γ-ліпопротеїдів. За думкою Маклагана, ця реакція викликана утворенням глобулінотимололіпідного комплексу, що містить 40 % глобулінів, 32 % тимолу, 18 % холестерину і 10 % фосфоліпідів.
Всі відомі в даний час проби тимолового помутніння відрізняються, головним чином, засобом готування буферного розчину. Якщо в методиці Маклагана використовується тимол, то в уніфікованому методі Хуерго і Попера тимол попередньо розчиняють в етанолі й отриманий розчин додають до барбітуратового буфера.
Прилади та матеріали:
1. Тимоловий реактив. У мірну колбу на 500 мл наливають 400 мл води та при сталому перемішуванні повільно піпеткою додають 7,5 мл концентрованого робочого розчину тимолу. Носик піпетки повинен бути занурений у воду. Розчин доводять водою до мітки і ще перемішують 10 хвилин. Зберігають при кімнатній температурі. Реактив стійкий декілька місяців.
2. Розчин з молярною концентрацією барій хлориду (BaCl2) 48 ммоль/л. Сухий шприц на 2 мл промивають дистильованою водою. У хімічний стакан відміряють 10 мл дистильованої води. З цієї кількості відбирають шприцом 2 мл води і вносять у флакон із BaCl2 (не розкриваючи) і перемішують. Після повного розчинення BaCl2 обережно розкривають флакон, додаючи в нього ту кількість води, що залишилася. Перемішують вміст флакона.
3. Розчин з молярною концентрацією еквівалентів сульфатної кислоти (H2SO4), 0,2 н. У мірну колбу на 100 мл вносять 50 мл дистильованої води. З флакона з кислотою піпеткою відбирають 10 мл розчину з молярною концентрацією еквівалентів H2SO4 2 моль/л, вносять у колбу і доводять об’єм до мітки дистильованою водою, перемішують. Розчин використовують охолодженим.
4. Стандартна суспензія барій сульфату (BaSO4). У мірний посуд на 5 мл піпеткою вносять 0,15 мл розчину BaCl2, доводять об’єм до мітки розчином з молярною концентрацією еквівалентів H2SO4 0,2 моль/л, який охолоджений до 10 оС.
5. Досліджувана сироватка крові.
6. Фотоелектроколориметр КФК–2.
Хід визначення за калібрувальним графіком
1. Побудова калібрувального графіка.
З розчинів сульфатної кислоти і суспензії барій сульфату готують ряд розведень, що відповідають одиницям помутніння S–H (табл. 4).
Стандартні розчини змішують у пробірці, струшують і у той же час фотометрують у кюветі з товщиною шару 5 мм проти дистильованої води за довжини хвилі 630 – 670 нм (розд. 2.1.1).
Будують калібрувальний графік в координатах: по осі ординат – екстинкція, по осі абсцис – одиниці помутніння S–H. Складають калібрувальну таблицю (стор. 48).
Таблиця 4
Склад стандартних розчинів
|
№ пробірки Інгредієнти, мл |
1 |
2 |
3 |
|
Стандартна суспензія BaSO4 |
0,67 |
1,35 |
2,7 |
|
0,2 н розчин H2SO4 |
2,33 |
1,65 |
0,3 |
|
Одиниці помутніння (S–Н) |
5 |
10 |
20 |
2. Визначення одиниць помутніння досліджуваної сироватки крові.
У пробірку вносять 3 мл тимолового реактиву, додають 0,05 мл сироватки крові, перемішують, витримують 30 хвилин при кімнатній температурі і фотометрують у кюветі з товщиною шару 5 мм за довжини хвилі 630 – 590 нм проти тимолового реактиву. Ступінь помутніння, що вимірюється в одиницях S–H, знаходять за калібрувальним графіком. Якщо помутніння перевищує 20 одиниць S–H, то варто провести повторне визначення із сироваткою крові, яка розведена фізіологічним розчином (розчин з масовою часткою натрій хлориду 0,9 %) у співвідношенні 1:1, а результат помножити на 2.
Норма: 0 – 4 одиниці S–H.
За отриманими даними екстинкції досліджуваної сироватки знаходять ступінь помутніння S–H і роблять клініко-діагностичний висновок (стор. 49).
Примітка. Важливою умовою одержання точних даних з колоїдостійкості білка в крові є відбір крові натще.
