- •Передмова
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Розділ 1 інструментальні методи аналізу в медицині
- •Розділ 2 правила роботи з приладами
- •2.1. Фотоелектроколориметри
- •2.1.2. Колориметр фотоелектричний концентраційний кфк-2мп
- •2.1.4. Фотометр аналітичний медичний мефан-8001
- •2.2. Правила проведення фотометрії та розрахунок результатів досліджень
- •2.3. Поляриметр
- •2.4. Рефрактометр ирф–22
- •2.5. Прилади для потенціометричного аналізу
- •2.5.2. Універсальний йономір эв–74
- •Контрольні питання до розділів 1 – 2
- •Розділ 3 методи вивчення білкового обміну
- •Визначення загального білка в сироватці крові й інших біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 1 Уніфікований метод визначення загального білка в сироватці крові. Біуретова реакція
- •Лабораторна робота № 2 Рефрактометричний метод визначення загального білка в сироватці крові
- •Лабораторна робота № 3 Визначення загального білка в сечі. Проба Гелера
- •Клініко-діагностичне значення визначення загального білка у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 4 Проби колоїдостійкості білків сироватки крові. Тимолова проба
- •Приклад побудови калібрувального графіка для визначення тимолової проби
- •Клініко-діагностичне значення тимолової проби
- •Лабораторна робота № 5 Визначення білкового спектру сироватки крові методом електрофорезу на папері
- •Приклад розрахунку білкових фракцій у відносних одиницях
- •Приклад розрахунку білкових фракцій в абсолютних одиницях
- •Клініко-діагностичне значення дослідження електрофореграм
- •Приклад опрацювання електрофореграм за допомогою комп'ютера
- •Контрольні питання до розділу 3
- •Розділ 4. Небілкові нітрогенвмісні (Азотисті) сполуки
- •Методи дослідження вмісту сечовини, креатину, креатиніну та сечової кислоти в біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 6 Визначення сечовини в сироватці крові та сечі за кольоровою реакцією з діацетилмонооксимом
- •Готування робочого реактиву
- •Клініко – діагностичне значення кількісного визначення сечовини у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 7 Визначення креатиніну в біологічних рідинах за кольоровою реакцією Яффе
- •Б) Хід визначення вмісту креатиніну в добовій сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження концентрації креатиніну у біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 8 Визначення сечової кислоти в сироватці крові за реакцією з фосфорно-вольфрамовим реактивом
- •Лабораторна робота № 9 Кількісне визначення сечової кислоти в сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження вмісту сечової кислоти у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 4
- •Розділ 5. Ферменти
- •Визначення активності α-амілази в біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 10 Визначення активності α–амілази зі стійким крохмальним субстратом. Метод Каравею
- •Лабораторна робота № 12 Визначення активності α-амілази в сироватці крові. Метод Кінга
- •Лабораторна робота № 13 Вплив рН середовища на активність ферментів
- •Лабораторна робота № 14 Вплив активаторів та інгібіторів на активність ферменту α-амілази
- •Лабораторна робота № 15 Вплив температури на активність
- •Готування розведеної слини
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності α-амілази у біологічних рідинах
- •Визначення амінотрансфераз у сироватці крові
- •Лабораторна робота № 16 Колориметричний метод визначення активності аспартатамінотрансферази у сироватці крові (за Райтманом – Френкелем)
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності амінотрансфераз у сироватці крові
- •Контрольні питання до розділу 5
- •Розділ 6. Методи вивчення вуглеводного обміну
- •Лабораторна робота № 17 Якісне визначення глюкози в біологічних рідинах. Реакція Тромера
- •Лабораторна робота № 18 Визначення глюкози в біологічних рідинах глюкозооксидазним (уніфікованим) методом
- •Лабораторна робота № 19 Кількісне визначення глюкози в сечі за кольоровою реакцією з о-толуїдиновим реактивом
- •Лабораторна робота № 20 Кількісне визначення глюкози в сечі поляриметричним методом
- •Клініко-діагностичне значення визначення глюкози в біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 6
- •Розділ 7. Обмін ліпідів
- •Біологічна роль ліпідів
- •Лабораторна робота №21 Якісна реакція на ацетон та ацетоацетатну кислоту
- •Лабораторна робота №22 Якісна реакція на ацетоацетатну кислоту. Реакція Герхарда
- •Лабораторна робота №23 Якісне виявлення ацетону у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота №24 Якісна реакція на β-оксимасляну кислоту
- •Клініко-діагностичне значення визначення кетонових тіл у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 7
- •Біохімічні показники для дорослих у нормі
- •Література
- •Безпальченко Віолета Михайлівна
- •Практикум Навчальний посібник для студентів вищих навчальних закладів
Лабораторна робота № 14 Вплив активаторів та інгібіторів на активність ферменту α-амілази
Мета: Дослідити вплив хімічних речовин на активність ферменту – α-амілази.
Теоретична частина: Активаторами ферментів є йони металів, органічні кислоти, самі ферменти (аутоактивація). Інгібуючу дію виявляють концентровані мінеральні кислоти, солі важких металів. Активатором α-амілази є натрій хлорид, а інгібітором – купрум (II) сульфат. Вплив цих речовин на активність α -амілази визначають за ступенем гідролізу крохмалю під впливом ферментів у присутності солей.
Прилади та матеріали: водяний термостат, досліджувана сироватка крові, розчин з масовою часткою крохмалю 0,5 %, розчин з масовою часткою йоду 0,1 % в розчині з масовою часткою калій йодиду 0,2 %, розчин з масовою часткою натрій хлориду (NaCl) 1 %, розчин з масовою часткою купрум (II) сульфату (CuSO4) 1 %.
Хід визначення
здійснюють за табл. 14. Проби досліджують у хімічних пробірках.
Після ретельного перемішування пробірки занурюють у термостат при температурі 37 – 38 0С. Через 5 хвилин інкубації додають по 3 краплі розчину йоду. Рідина у першій пробірці забарвлюється у червоний або фіолетовий колір; у другій – у червоний або жовтий; у третій – у синій.
За отриманими результатами роблять висновок про вплив різноманітних солей на активність ферменту – α-амілази.
Таблиця 14
Вміст досліджуваних проб
|
Інгредієнти, мл |
Проба №1 |
Проба №2 |
Проба №3 |
|
Дистильована вода |
2,5 |
2 |
2 |
|
розчин з масовою часткою NaCl 1 % |
– |
0,5 |
– |
|
розчин з масовою часткою CuSO4 1 % |
– |
– |
0,5 |
|
Інкубують протягом 3 – 5 хвилин при 37 0С |
|||
|
Сироватка крові |
0,1 |
0,1 |
0,1 |
|
Перемішують |
|||
|
розчин з масовою часткою крохмалю 0,5 % |
2 |
2 |
2 |
Лабораторна робота № 15 Вплив температури на активність
α -амілази слини
Мета: Дослідити вплив температури на активність ферменту – α-амілази слини й установити оптимальну температуру її дії.
Теоретична частина: Стійкість ферментів до нагрівання залежить від умов реакції (рН середовища, присутності різних солей) і від хімічної природи самого ферменту. Ряд ферментів (рибонуклеаза, трипсин та ін.) відзначаються високою термостійкістю – вони мало інактивуються навіть при температурі 60 – 80 оС. Інші ферменти, навпаки, руйнуються при короткочасному нагріванні їх до 40 – 50 оС. Температура, яка відповідає максимальній швидкості ферментативної реакції, називається оптимальною (Топт). Для більшості ферментів вона коливається від 37 до 45 оС. При зниженні температури, порівняно з оптимальною, активність ферментів зменшується, а при температурі нижче нуля вона повністю втрачається, проте (на відміну від високої температури) за цих умов їх структура не руйнується. Тому при підвищенні температури ферменти повністю відновлюють свою активність.
Принцип методу: α-амілаза гідролізує розщеплення крохмалю з утворенням кінцевих продуктів, які не дають кольорової реакції з йодом. Про активність α-амілази судять за вимірюванням зменшення концентрації крохмалю.
Прилади та матеріали: баня водяна, термометр лабораторний, водяний термостат, пробірки, піпетки на 1 мл і 2 мл, скляні палички, розчин з масовою часткою крохмалю 1 %, розчин з масовою часткою йоду 0,3 % у розчині з масовою часткою калій йодиду 3 %, циліндр на 50 мл, фарфорова пластина, розведена досліджувана слина.
