- •Список литературы
- •2.0Бзор литературы
- •2.1. Общие представления по этологии пчел.
- •2.3. Некоторые аспекты микробиологического состояния пчелиной семьи.
- •Признаки болезни.
- •2.5. Микрофлора здоровой пчелиной семьи .
- •2.6. Почему болеют пчелы.
- •2.7. Хитозан и его значение
- •2.9. Основные этапы получения хитозана
- •2.8. Источники и способы получения хитозана
- •2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
- •2.11. Пчела как потенциальный источник хитозана
- •3.Экспериментальная часть
- •3.1.Объекты и методы исследования.
- •3.1.1. Объекты исследования.
- •3.1.2. Методы исследования.
- •Отбор проб и смывов для микробиологического анализа.
- •Подготовка к анализу.
- •3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
- •3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
- •3.1.2.4. Определение чувствительности микроорганизмов к бактерицидным веществам.
- •3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
- •1. Жесткий щелочной гидролиз
- •2. Мягкий щелочной гидролиз
- •3.1.2.8. Определение динамической вязкости
- •3.1.2.9. Кондуктометрическое определение степени деацетилирования хитозана
- •3.2. Результаты и обсуждение.
- •Изучение микрофлоры ульев здоровых пчелиных семей в зависимости от годичного цикла.
- •3.2.1. Изучение особенности годичного цикла жизни пчелиной семьи.
- •3.2.2. Происхождение и роль микрофлоры здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.4.Влияние гигиенических условий углекислого газа в гнезде на семьи пчел.
- •3.2.5. Защитные свойства внешних покровов пчел от микрофлоры.
- •3.2.6. Получение хитозана из подмора пчел.
- •3.2.6.1.Характеристика подмора пчел.
- •3.2.6.2 Депротеинирование
- •3.2.6.3. Деацетилирование
- •3.2.6.4. Ферментативный гидролиз хитозана
- •3.2.7.Технология переработки подмора пчел.
- •3.2.8.Технология введения пчелозана (хитозана) в зубные пасты.
- •3.2.9.Клинические испытания зубной пасты «Пчелка».
- •5. Список литературы.
Подготовка к анализу.
Выявленные выше изложенным методом микроорганизмы с чашек Петри переносятся в пробирки со скошенным МПА для бактериальных культур и со скошенным СА для грибных культур в асептических условиях. Пробирки помещаются в термостат и выдерживаются при 37°С в течение времени , оптимального для каждой культуры. Чистые культуры микроорганизмов используются для последующих исследований по идентификации микроорганизмов.
3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
Идентификация бактериальной микрофлоры проводят на диагностических средах По результатам анализа роста , цветности , запаха , соответствующим химическим реакциям согласно определютелю бактерий Берджи осуществляют идентификацию (Хоулт Дж. ред. ,1998).
3.1.2.3.1. Питательные диагностические среды. Среда №1 Среда для выращивания бактерий.
Бактофок-МК 20,0 г.
Натрий хлорид 5,0 г.
Глюкоза 1,0 г.
Агар микробиологический 13,0г.
Вода дистиллированная 1000 см3
рН после стерилизации 7,3 ± 0,2
Все инградиенты растворяются в воде , прибавляют замоченный заранее агар , нагревают до полного его расплавления , фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Стерилизуют при температуре 121°С в течение 15 минут.
Среда №2 - Среда для выращивания грибов (Сабуро)
Бактофок-МК 10,0 г.
Глюкоза 40,0 г.
Агар микробиологический 13,0 г.
Вода дистиллированная 1000 см3
рН после стерилизации 5,6 ± 0,2
Все ингредиенты растворяют в воде , прибавляют замоченный заранее агар , нагревают до расплавления , фильтруют через ватно-марлевый фильтр.Стерилизуют при 12ГС в течение 15 минут. После стерилизациидобавляют 100 мг. Бенаилпенициллина и 100 мг. Тетрациклина ( либо перед стерилизацией - 50 мг. Левомицетина) на 1000 см3 среды.
Среда №3.- Среда обогащенная для бактерий сем.ЕЩегоЬайепасеае.
Бактофок- МК 20,0 г.
Натрий фосфат двузамещенный 7,5г.
Натрий фосфат однозамещенный 2,5 г.
Глюкоза 10,0 г.
Феноловый красный 0,08 г.
Малахитовый зеленый 0,015 г.
Вода дистиллированная 1000 см3
рН после стерилизации 7,3 ± 0,2
Питательную основу и соли растворяют в дистиллированной воде при нагревании , вносят глюкозу , прибавляют 8 см3 1№ раствора фенолового красного и 3 см3 0,5№ малахитового зеленого , устанавливают рН , кипятят 1 мин., фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Смтерилизуют при температуре 121° С в течение 15 минут.
Среда №4 - (агар Эндо сухой) - Среда для выделения бактерий сем.ЕМегоЬа^епасеае.
Панкриатический гидролизат 12,0 г.
рыбной муки
Дрожжевой экстракт импортный 1,0 г.
Натрий хлористый 3,4 г.
О-лактоза 10,0 г.
Сульфит натрия , безводный 0,8 г.
Динатрий фосфат 0,5 г.
Фуксин основной 0,2 г.
Агар микробиологический 10,0 г.
РН 7,4 ±0,2
Среда №5 - ( висмут-сульфит агар сухой) - Среда для выделения бактерий сем. ЕЩегоЬас1епасеае.
Панкриатический гидролизат кильки 16,6 г
.16,4 г.
г.
г. 2,24 г. 4,28 г.
1,32 г. 3,63 г. 0,017 г. 0,63 г. 2,6 г.
Агар микробиологический
Агароид
Д-глюкоза
висмут лимоннокислый Сульфит натрия
безводный
Соль Мора
Динатрий фосфат обезвоженный
Бриллиантовый зеленый Сода кальцинированная
Натрий хлорид
РН 7,6
± 0,2
Среда№6. - Среда для определения ферментации глюкозы.
20,0 г. 5,0 г. 40,0 г. 0,08 г. 1000 см3
рН после стерилизации 7,2 ± 0,2
Питательную основу и натрий хлорид растворяют в дистиллированной воде при нагревании , вносят глюкозу , прибавляют 8 см3 1 % раствора фелового красного , устанавливают рН, кипятят 1 мин. , фильтруют и разливают в пробирки с поплавками по 4-5 см3. Стерилизуют при температуре 121°С в течение 15 мин. Затем как можно быстрее охлаждают среду.
Среда №7 - Среда для определения восстановления нитратов в нитриты.
Бактофок- МК 5,0 г.
Натрий хлорид 5,0 г.
Калий нитрат 1,5 г.
Вода дистиллированная 1000 см3.
Бактофок-МК Натрий хлорид Глюкоза
Феноловый красный Вода дистиллированная
Все инградиенты растворяют в воде при нагревании , устанавливают рН , кипятят 1 мин., фильтруют через бумажный фильтр и разливают в пробирки по 4-5 см3. Стерилизуют при температуре 121 °С в течение 15 минут.
Среда №8 - Среда для выращивания Ps. aeruginosa и Staphylococcus aureus.
Бактофок-МК 10,0 г.
Натрий хлорид 5,0 г.
Калий фосфат двузамещенный 2,5 г.
Глюкоза 2,5 г.
Вода дистиллированная 1000 см3
рН после стерилизации 7,3± 0,2
Питательную основу и соли растворяют в воде при нагревании , вносят глюкозу , устанавливают рН , кипятят 1 мин., фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют при температуре 121 °С в течение 15 мин.
Среда №9 - глицериновый агар выявления пиоцианина у Рб. Aeroginosa.
Бактофок -МК 20,0г.
Глицерин 10,0 г.
Магний хлорид безводный 1,4 г.
Калий сульфат безводный 10,0г.
Агар микробиологический 15,0 г.
Вода дистиллированная 1000 см3
рН после стерилизации 7,2 ± 0,2
Все ингредиенты , кроме глицерина , растворяют в воде и оставляют на 15 мин. Затем вносят глицерин , тщательно перемешивают , растворяют при нагревании , устанавливают рН, ькипятят 1 мин., добавляют замоченный заранее агар , нагревают до полного его расплавления , фильтруют через ватно- марлевый фильтр . Стерилизуют при температуре 121°С в течение 15 мин.
Среда №10 -Среда для идентификации Staphylococcus aureus.
Бактофок-МК 10,0 г.
Натрий хлорид 75,0 г.Маннит 10,0 г.
Феноловый красный 0,025 г.
Агар микробиологический 15,0 г.
Вода дистиллированная 1000 см3
Характерная морфология колоний
Все ингредиенты растворяют в воде , вносят 2,5 см3 1% раствора фенолового красного , устанавливают рН , кипятят 1 мин. , прибавляют замоченный заранее агар , нагревают до полного расплавления , фильтруют. Стерилизуют под давлением при температуре 121°С в течение 15 минут.
