- •Список литературы
- •2.0Бзор литературы
- •2.1. Общие представления по этологии пчел.
- •2.3. Некоторые аспекты микробиологического состояния пчелиной семьи.
- •Признаки болезни.
- •2.5. Микрофлора здоровой пчелиной семьи .
- •2.6. Почему болеют пчелы.
- •2.7. Хитозан и его значение
- •2.9. Основные этапы получения хитозана
- •2.8. Источники и способы получения хитозана
- •2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
- •2.11. Пчела как потенциальный источник хитозана
- •3.Экспериментальная часть
- •3.1.Объекты и методы исследования.
- •3.1.1. Объекты исследования.
- •3.1.2. Методы исследования.
- •Отбор проб и смывов для микробиологического анализа.
- •Подготовка к анализу.
- •3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
- •3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
- •3.1.2.4. Определение чувствительности микроорганизмов к бактерицидным веществам.
- •3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
- •1. Жесткий щелочной гидролиз
- •2. Мягкий щелочной гидролиз
- •3.1.2.8. Определение динамической вязкости
- •3.1.2.9. Кондуктометрическое определение степени деацетилирования хитозана
- •3.2. Результаты и обсуждение.
- •Изучение микрофлоры ульев здоровых пчелиных семей в зависимости от годичного цикла.
- •3.2.1. Изучение особенности годичного цикла жизни пчелиной семьи.
- •3.2.2. Происхождение и роль микрофлоры здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.4.Влияние гигиенических условий углекислого газа в гнезде на семьи пчел.
- •3.2.5. Защитные свойства внешних покровов пчел от микрофлоры.
- •3.2.6. Получение хитозана из подмора пчел.
- •3.2.6.1.Характеристика подмора пчел.
- •3.2.6.2 Депротеинирование
- •3.2.6.3. Деацетилирование
- •3.2.6.4. Ферментативный гидролиз хитозана
- •3.2.7.Технология переработки подмора пчел.
- •3.2.8.Технология введения пчелозана (хитозана) в зубные пасты.
- •3.2.9.Клинические испытания зубной пасты «Пчелка».
- •5. Список литературы.
3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
Цель - удаление белка и белковых веществ из подмора путем перевода белковой части в растворимое состояние с последующим ее отделением от подмора.Рис.б.Установка щелочного гидролиза хитина.
1 .штатив
2.ячейка
3.мешалка 4.термостат 5.контактный
термометр 6.термометр
Водное эмульгирование
Сырье - сухие целые пчелы размером по 11-12 мм в количестве ЗОг взвешивали на технических весах и помещали в ячейку, подключенную к термостату, добавляли 300мл дистиллированной воды. Водное эмульгирование проводили при постоянном перемешивании двухлопастной мешалкой при 40-50°С в течение 40 минут. На стадии водного эмульгирования 10-12% белковых веществ переходит в водный раствор. По окончании эмульгирования суспензию фильтровали через стеклянный пористый фильтр ПОР 160 в колбе Бунзена и получали эмульгат коричневого цвета, а твердую часть подвергали депротеинированию.
Подмор депротеинировали водными растворами гидроксида натрия концентрацией 1%, 3% и10%. Щелочной гидролиз осуществляли двумя методами:
1. Жесткий щелочной гидролиз
6 Л
50 °С в течение 2-х часов. Далее суспензию подвергали фильтрованию через стеклянный пористый фильтр ПОР 160 и получали хитин и гидролизат темно-коричневого цвета. Хитин промывали дистиллированной водой до рН = 7 (определение по лакмусовой бумажке) и высушивали в сушильном шкафу при 110°С в течение 12 ч до влажности 8 -10%.
2. Мягкий щелочной гидролиз
Гидролиз в мягких условиях при концентрации ШОН 3% проводили в две стадии, т.к. при депротеинировании подмора в одну стадию отделение белковой части составляет 50 - 55%. Для исчерпывающего отделения белка необходимо провести повторное депротеинирование. Становится возможным выделение кормового белка из щелочных гидролизатов, полученных в мягких условиях.
стадия:
100г сырья, взвешенного на технических весах, помещали в колбу на 2000мл и добавляли 3% ИаОН в количестве 2000мл (концентрация субстрата 5 %). Гидролиз осуществляли при комнатной температуре при периодическом перемешивании мешалкой в течение 24 ч. По окончании гидролиза разделяли суспензию на капроновом фильтре с получением гидролизата и хитин-меланинового комплекса. Полученный осадок промывали дистиллированной водой до нейтрального значения рН промывных вод и высушивали в сушильном шкафу при 110 °С до влажности 8-10%.
стадия:
Щелочную доочистку хитина проводили 1%-ным раствором ЫаОН и 0,1%-ным раствором Ма28 03 с концентрацией субстрата 10%. Гидролиз проводили в ячейке при постоянном перемешивании мешалкой при 65 - 70°С в течение 40 мин. Далее проводили фильтрацию на капроновом фильтре, хитин промывали дистиллированной водой до рН = 7 и высушивали в сушильном шкафу при 110 °С до влажности 8-10%.
Ферментативный гидролиз
Ферментативный гидролиз проводили в две стадии, т.к. при ферментативном депротеинировании подмора в одну стадию отделение белковой части составляет 45 -50%. Для исчерпывающего отделения белка необходимо провести повторное щелочное депротеинирование. Становится возможным выделение кормового белка из ферментного гидролизата.
стадия:
Водное эмульгирование подмора провели с концентрацией субстрата 10%. По окончании эмульгирования при помощи 10%-ного раствора №ОН довели рН суспензии до 7,0 и добавили ферментный препарат - трипсин в количестве 0,05% к общему объему суспензии (0,15г). Гидролиз проводили при 40-45 °С (не выше 50 °С) при постоянном перемешивании мешалкой в течение 2 ч.
Осадок промывали дистиллированной водой до рН=7 и высушивали при 110°С до влажности 8-10% .
стадия:
Щелочную доочистку хитина проводили 1%-ным раствором КаОН и 0,1% -ным раствором Ма2803 с концентрацией субстрата 10%. Гидролиз проводили в ячейке при постоянном перемешивании мешалкой при 65 -70 °С в течение 40мин. Хитин фильтровали на капроновом фильтре, промывали дистиллированной водой до рН = 7 и высушивали в сушильном шкафу при 110 °С до влажности 8-10%
.
деацетилирования колбу охлаждали до 40 °С и фильтровали реакционную массу через стеклянный пористый фильтр ПОР 160 и капроновый фильтр. Хитозан промывали дистиллированной водой до нейтральной реакции промывных вод и высушивали в сушильном шкафу при 50 °С.
Гидролиз хитозана
После процессов депротеинирования и деацетилирования, проведенных в условиях аналогичных технологии получения хитозана из ракообразных (криля), пчелиный хитозан остается высокомолекулярным полимером и не обладает водорастворимыми свойствами. Для придания водорастворимости хитозан гидролизуют комплексом хитинолитических ферментов с получением олигомеров.
Навеску хитозана 1,0 г, взвешенную на аналитических весах, помещали в стакан объемом 250 мл, добавляли 40мл 1М уксусной кислоты, 10мл 1% №N3 и 106 мл дистиллированной воды. Суспензию перемешивали на магнитной мешалке до полного растворения хитозана (18-20ч). рН раствора доводили до 5.2 при помощи 1н ИаОН. Стакан с раствором хитозана помещали в термостат.
При достижении температуры раствора 55°С добавляли 100мг фермента предварительно растворенного в 2мл дистиллированной воды. Гидролиз осуществляли при температуре раствора 50-55 °С в течение 1-2ч. Гидролиз останавливали титрованием 1н раствором ЫаОН до рН = 8-9 при этом гидролизованный хитозан выпадал в осадок. Осадок промывали дистиллированной водой до рН=7, отделяли центрифугированием и подвергали лиофильной сушке
3.1.2.6. Определение влажност
и
температуре 500 °С. После взвешивания остывшего в эксикаторе тигля с золой его повторно прокаливают в течение 1 ч, и взвешивают с абсолютной погрешностью не более 0,001г. Зола имеет белый или беловатый цвет и не должна содержать черных вкраплений.
О)
^(тг^т!)
т
где ш2- масса тигля с золой, г ш1 — масса пустого тигля, г ш - навеска исследуемого образца, г
