- •Список литературы
- •2.0Бзор литературы
- •2.1. Общие представления по этологии пчел.
- •2.3. Некоторые аспекты микробиологического состояния пчелиной семьи.
- •Признаки болезни.
- •2.5. Микрофлора здоровой пчелиной семьи .
- •2.6. Почему болеют пчелы.
- •2.7. Хитозан и его значение
- •2.9. Основные этапы получения хитозана
- •2.8. Источники и способы получения хитозана
- •2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
- •2.11. Пчела как потенциальный источник хитозана
- •3.Экспериментальная часть
- •3.1.Объекты и методы исследования.
- •3.1.1. Объекты исследования.
- •3.1.2. Методы исследования.
- •Отбор проб и смывов для микробиологического анализа.
- •Подготовка к анализу.
- •3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
- •3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
- •3.1.2.4. Определение чувствительности микроорганизмов к бактерицидным веществам.
- •3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
- •1. Жесткий щелочной гидролиз
- •2. Мягкий щелочной гидролиз
- •3.1.2.8. Определение динамической вязкости
- •3.1.2.9. Кондуктометрическое определение степени деацетилирования хитозана
- •3.2. Результаты и обсуждение.
- •Изучение микрофлоры ульев здоровых пчелиных семей в зависимости от годичного цикла.
- •3.2.1. Изучение особенности годичного цикла жизни пчелиной семьи.
- •3.2.2. Происхождение и роль микрофлоры здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.4.Влияние гигиенических условий углекислого газа в гнезде на семьи пчел.
- •3.2.5. Защитные свойства внешних покровов пчел от микрофлоры.
- •3.2.6. Получение хитозана из подмора пчел.
- •3.2.6.1.Характеристика подмора пчел.
- •3.2.6.2 Депротеинирование
- •3.2.6.3. Деацетилирование
- •3.2.6.4. Ферментативный гидролиз хитозана
- •3.2.7.Технология переработки подмора пчел.
- •3.2.8.Технология введения пчелозана (хитозана) в зубные пасты.
- •3.2.9.Клинические испытания зубной пасты «Пчелка».
- •5. Список литературы.
2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
Гаммарус (Быков В.П.,1999).
Одним из наиболее массовых и легко добываемых объектов является рачок-бокоплав Gammarus (Rivulogannnarus) lacustris Sars, чрезвычайн
Сырье |
Содержани |
Содержание, % на сухое вещество |
|||
|
е влаги, % |
|
|
|
|
|
|
Липидо 6 |
Общего |
Золы |
хитина |
|
|
в |
о азота |
|
|
Гаммарус |
|
|
|
|
|
сушеный |
10,2 |
13,4 |
8,76 |
22,7 |
6,8 |
мороженый |
77,2 |
14,1 |
9,04 |
20,9 |
6,2 |
Таблица 5. |
Реагент и его концентрация, % |
Соотношение гаммарус;5 а и реагента |
Продолжительность процесса, мин |
Температура, °С |
Дефрострация |
промывка теплой водой температурой 35-40°С (для мороженого гаммаруса). |
|||
Деминерализация -1 |
НС1, 3 |
1: (6-8) |
20-30 |
40 |
Депротеинирование - 1 |
ШОН, 1,52 |
1: (5-6) |
60 |
40 |
Деминерализация -2 |
НС1, 1,5-2 |
1: (4-5) |
20-30 |
40 |
Депротеинирование - 2 |
ИаОН, 1,52 |
1: (4-5) |
60 |
40 |
Деацетилирование |
ЫаОН, 40 |
- |
120 |
90 |
Оптимальная технологическая схема
получения хитозана:
Хитозан получался светло-кремового цвета со следующими характеристиками: вязкость - 750 сПз, молекулярная масса - 620 кДа, степень деацетилирования - 86%.
Краб
В качестве сырья для производства хитозана на Дальнем Востоке используют панцирь ходильных конечностей, панцирь головогруди (карапакс) и абдомен следующих видов охотоморских крабов: камчатского краба (Paralithodes camtschaticus); синего краба (Paralithodes platypus (Brandt); равношипого (Lthodes aeguispina Benedict); стригуна опилио (Chionoecetes opilio); стригуна бэрди (Chionoecetes bairdi) /16/. Основной химический состав карапакеа камчатского краба и технологическая схема получения хитозана представлены в таблицах 6 и 7.
Таблица 6.
Химический состав карапакеа
камчатского краба (Новиков В.Ю.,1999). |
Содержаний е влаги,% |
Содержание, % на сухое вещество |
|||
|
|
Липидо в |
Золы |
Белка |
хитин а |
Карапакс акклиматизированн ого камчатского краба |
68,1 |
0,9 |
17,0 |
8,5 |
5,5 |
Стадия |
Концентрац ия р-ра НС1 ~или№ОН,% |
Соотношени егаммаруса и реагента |
Продолжи -тельность процесса, мин |
Темпера тура, °С |
Деминерализация -1 |
4-6 |
1: (6-8) |
120-240 |
40 |
Депротеинирование - 1 |
4-6 |
1: (7-8) |
120-180 |
50 |
Деминерализация -2 |
4-6 |
1: (5-6) |
60-120 |
40 |
Депротеинирование - 2 |
4-6 |
1: (5-7) |
60-90 |
40 |
Деацетилирование |
50 |
- |
240-360 |
100-120 |
Криль (креветки)
Криль является третьим источником сырья для получения хитина после крабов и креветок. Его запасы в районе Антарктиды, по некоторым оценкам, составляют 50млн.т, а выход хитина после обработки криля- сырца - около 1%. Сегодня мировой вылов криля оценивается в ЮОтыс.т. В настоящее время сырьевая база криля может обеспечить почти круглогодичный промысел/18/. Состав антарктического криля и технологическая схема получения хитозана представлены в таблицах 8 и 9.
Сырье |
Содержание влаги, % |
Содержание, % на сухое вещество |
|||
|
|
Липидо в |
Золы |
Белка |
хитин а |
Антарктическ ий криль |
73-77 |
2,03,2 |
2,6-3,0 |
До 45 |
2,84,5 |
Таблица 9. |
Концентрация р-ра НС1 или NaOH,% |
Соотношение гаммаруса и реагента |
Продолжительность процесса, мин |
Температура, °С |
Деминерализация -1 |
1,5-2 |
1: (5-6) |
90-120 |
40 |
Депротеинирование -1 |
1-2 |
1:3 |
90-100 |
40 |
Деминерализация -2 |
1-1,5 |
1:5 |
0-30 |
40 |
Депротеинирование -2 |
1-2 |
1: (4-5) |
90-100 |
40 |
Деацетилирование |
50 |
- |
100-120 |
100-120 |
Насекомые
Личинки мухи домашней обыкновенной Musca domestika S. (покровы опарышей)
Оптимальная технологическая схема
получения хитозана (Сафронова Т.М.,1995)
хитин с зольностью в 50-100 раз ниже, чем у крабового, кроме того процедура обработки значительно упрощается (Феофилова Е.П.,1999). Химический состав личинки мухи домашней представлен в таблице 10.
Таблица 10.
Качество хитозана из предкуколки
(Быков В.П.,1995).
Сырье |
Содержание, % на сухое вещество |
|||
|
Липи- |
Зо |
Бел |
Хити |
|
ДОВ |
лы |
ка |
на |
Личинки мухи |
15-20 |
- |
50-55 |
5 |
Выделение хитина из предкуколки возможно традиционным кислотно- щелочным методом. При получении хитозана концентрацию щелочи можно снизить до 35-40%, увеличить выход конечного продукта до 3-4% и получать высоко деацетилированный хитозан. Основные качественные характеристики хитозана из предкуколки представлены в таблице 11.
Таблица 11 |
Хитозан сухой неизмельченный |
1% уксусный раствор хитозана в 2% уксусной кислоте |
Внешний вид |
Светло-серые продолговатые изогнутые частицы длиной 3-4мм с черными точками |
Слегка мутноватый с множеством включений черных точек (челюстей), равномерно расположенных по всей толщине раствора |
Запах |
Без запаха |
Уксусной кислоты |
Содержание, %
|
6,5 0,17 |
|
Во Всероссийском научно-исследовательском институте животноводства были разработаны метод и технология утилизации бесподстилочного нативного навоза свиноферм с помощью личинок комнатной мухи. Сущность процесса заключается в том, что личинки синантропных мух, питаясь нативным навозом, очень быстро наращивают биомассу (личинки по своей массе в 300-320 раз больше массы яиц), полноценную по своим качествам и пригодную для использования в различных отраслях промышленности. Умерщвленные мухи, пупарии и избыточное количество личинок используют для получения хитина и хитозана. Второй компонент, полученный в результате биологической переработки биопрепарат (биоперегной) представляет собой хорошее органическое удобрение (Эрнст JI.K.,2000).
Обработка сырья, в качестве которого используются мухи или формы их постадийного развития, для получения хитина и хитозана проводится классическим методом (депротеинирование 2-5 % раствором гидроксида натрия при 80-100 °С, деацетилирование 40-50 % водным раствором гидроксида натрия при 100 -110 °С) (Веротченко М.А.,2000).
