Центральное стерилизационное отделение

Задача центрального стерилизационного отделения (ЦСО) состоит в обеспечении лечебно-профилактических учреждений стерильными изделиями медицинского назначения: хирургическими инструментами, шприцами, иглами, контейнерами, хирургическими перчатками, лейкопластырями, перевязочными и шовными материалами и др.

Функции центрального стерилизационного отделения (ЦСО):

- прием, хранение различных материалов до их обработки и стерилизации;

- разборка, выбраковка, учет изделий;

- предстерилизационная очистка (мытье, сушка);

- комплектование, упаковка, укладка в стерилизационную тару;

- стерилизация изделий;

- контроль качества предстерилизационной очистки и стерилизации;

- ведение документации и строгий учет приема и выдачи изделий;

- выдача стерильных изделий больницам, поликлиникам.

Помещения любого центрального стерилизационного отделения (ЦСО) обычно подразделяются на 2 зоны: нестерильную и стерильную.

В нестерильной зоне располагаются: моечная, комната изготовления, укладки и упаковки перевязочных материалов, комната обработки перчаток, стерилизационная (загрузочная сторона стерилизатора, нестерильная половина), комната контроля, комплектации и упаковки инструментов, кладовая упаковочных материалов, кабинет персонала, санитарный узел.

В стерильной зоне располагаются: стерилизационная (разгрузочная сторона стерилизатора, если они шкафного типа), склад для стерильных инструментов, экспедиция.

Уборку производственных помещений ЦСО проводят 1 раз в день с обязательным применением дезинфицирующих средств.

При планировании работы ЦСО необходимо предусматривать организацию 2-х поточной обработки:

1 поток - обработка и стерилизация инструментов, шприцов, игл, резиновых изделий.

2 поток - подготовка и стерилизация белья и перевязочного материала.

Классификация антисептиков по механизму действия

1. Поверхностно-активные (жирные кислоты, мыла, детергенты) действуют поверхностно, вызывая повреж­дение клеточной стенки.

2. Фенол, крезол и их производные повреждают клеточную стенку и клеточные белки.

3. Формальдегид вызывает денатурацию белков не только вегетативных форм бактерий, но и спор.

4. Окислители (КМnO₂, Н₂О₂) – биологические яды, ак­тивным является атомарный кислород.

5. Хлорсодержащие вещества (хлорамин, хлорная известь, гипохлорид кальция) действуют благодаря вы­делению газообразного хлора.

6. Акридины обладают сродством к нуклеиновым кис­лотам, нарушают процессы клеточного деления и вызывают инактивацию микроорганизмов.

7. Соли тяжелых металлов вызывают коагуляцию белков, обладают бактерицидным действием по отношению к бактериям и вирусам.

Самостоятельная работа студента на практическом занятии

1. Демонстрация опыта действия солнечного света на бакте­рии (опыт Бухнера).

На чашку Петри с МПА делают обильный посев культуры, затем на агар накладывают буквы, вырезанные из черной бумаги и предварительно простерилизованные. Открытая чашка под­вергается действию прямых солнечных лучей в течение 1–1,5 часа, после чего буквы снимают и ставят чашки Петри в термостат на 24 часа. Рост культур произойдет только в тех местах, кото­рые были защищены черными буквами от действия солнечных лучей.

2. Знакомство с автоклавом и сухожаровым шкафом.

3. Подготовка лабораторной посуды к стерилизации. Сту­денты готовят к стерилизации чашки Петри, колбы, пипетки и др.

4. Демонстрация бактериальных фильтров (Шамберлана, Зейтца).

5. Проведение бактериологического контроля работы авто­клава. В автоклав помещают кусочек марли, смоченной тест-микробом, и помещают в автоклав. После окончания работы ав­токлава этот кусочек стерильным пинцетом помещают в пробир­ку с МПБ и инкубируют в термостате 24 часа. При правильном режиме работы МПБ остается прозрачным (стерильным).

6. Действие спирта на бактерии (опыт Алфельда и Вахле).

День первый. В две пробирки, содержащие по 5 мл 50% и 96% спирта, вносят кусочки ткани, пропитанные тест-микробами (стафилококки, кишечная палочка). Экспозиция 10 минут. После экспозиции ткань промывают стерильной водой 5 мин и помещают в пробирки с МПБ, затем инкубируют 24 ч.

День второй. Для контроля производят высев на МПА.

7. Действие хлорамина на бактерии (опыт Гепперта).

День первый. В пробирку, содержащую 3 мл 1 %-ного раствора хлорамина, вносят кусочки ткани, пропитанные тест-микробами (стафилококки, кишечная палочка). Экспозиция 10 минут. После экспозиции ткань промывают стерильной водой 5 минут и помещают в пробирку с МПБ. Посевы инкубируют в термостате 24 часа.

День второй. Для контроля производят высев на МПА.

8. Действие красителей на бактерии (опыт Коха и Веринга).

День первый. В две пробирки, одна из которых содержит 3 мл 5 %-ного раствора малахитовой зелени, вносят кусочки тка­ни, пропитанные тест-микробами. Экспозиция 10 минут. Посте экспозиции ткань промывают стерильной водой 5 минут и по­мещают в пробирки с МПБ. Посевы инкубируют в термостате 24 часа.

День второй. Для контроля производят высев на МПА.