Посевы на стерильность хирургического инструмента

«5.1. Хирургический инструментарии с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными средами. Как исключение, в отдельных случаях, если простерилизованные инструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели, ранорасширители и т. д.), производят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или стерильной водопроводной воде, и погружают салфетку в пробирку с тиогликолевой средой Аналогичные смывы с других инструментов засевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро».

«5.2. Методика посева на стерильность игл и шприцов.

Для контроля отбирают шприцы малой емкости (1,0 мл или 2,0 мл в условиях бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают в пробирки с питательными средами отдельно цилиндр, поршень, иглы.

При необходимости контроля шприцев большей емкости (10,0-20,0 мл и более) исследование стерильности производят методом смыва, при этом стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или в стерильной водопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца и погружают салфетку в питательную среду».

Контроль стерильности систем переливания крови многоразового использования, зондов, катетеров, резиновых перчаток и других изделий проводят путем полного погружения мелких изделий или небольших отрезанных кусочков (1-2 см) в питательные среды.

Посев на стерильность хирургического шовного материала (кетгут, шелк). Подготовленный к работе кетгут в операционном блоке хранят в спиртовом растворе йода. Из раствора моток кетгута перекладывают стерильным пинцетом в стерильный 10% раствор гипосульфита натрия и выдерживают в нем в течение 24 часов при комнатной температуре, затем перекладывают в пробирки с 20,0-30,0 мл стерильной дистиллированной воды, также выдерживают в течение 24 часов при комнатной температуре.

Подготовленный к работе шелк хранят в спиртовом растворе, поэтому перед посевом шелк (лавсан) помещают на 24 часа в стерильную дистиллированную воду при комнатной температуре.

Непосредственно перед посевом кетгут (шелк) извлекают стерильным пинцетом и перекладывают в стерильную чашку Петри, затем его разрезают ножницами на мелкие кусочки длиной 1-2 см. Кетгут при этом раздергивают для лучшего прорастания микроорганизмов.

Посев и кетгута, и шелка производится одинаково – в 2 пробирки с тиогликолевой средой, 2 пробирки со средой Хоттингера, помещая в каждую пробирку по 4-5 кусочков исследуемого материала.

«6. Учет результатов. Материал считается стерильным при отсутствии роста во всех посевах. Материал не стерилен при росте микрофлоры».

Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов

Смывы с кожи операционного поля и рук хирургов производят стерильными марлевыми салфетками размерами 5x5 см², смоченными в стерильном физиологическом растворе. Марлевой салфеткой тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После забора проб марлевую салфетку помещают в широкогорлые пробирки с водой или физиологическим раствором и стеклянными бусами, выдерживают в течение 10-ти минут, производя, таким образом, отмыв марлевой салфетки. Отмывную жидкость засевают глубинным способом по 0,5 мл на две чашки Петри, а марлевую салфетку - в 0,5%-ный сахарный бульон.

Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение 48 часов.

«7. Учет результатов.

Кожа и руки стерильны при отсутствии роста микроорганизмов как на твердой, так и на жидкой питательной среде».

Мероприятия по профилактике внутрибольничных инфекций в акушерских стационарах (приказ № 345 МЗ РФ от 26.11.1997 г.)

В данном документе проведение микробиологического мониторинга является важным параметром эпидемиологического надзора, преследующего цель - определение этиологической структуры внутрибольничных инфекций и оценку качества противоэпидемиологического надзора и предполагает:

- обследование персонала на условно-патогенную и патогенную микрофлору осуществлять только по эпидемиологическим показаниям;

- обследование медицинского персонала на носительство золотистого стафилококка при приеме на работу и в процессе профессиональной деятельности в плановом порядке не проводится;

- родильный дом (отделение) не менее одного раза в год должно закрываться на проведение плановой дезинфекции, в том числе для проведения косметического ремонта)...

Открытие стационара, закрывшегося по эпидпоказаниям, допускается только после получения отрицательного результата лабораторного контроля окружающей среды и разрешения центров Госсанэпиднадзора. В случае планового закрытия обследование объектов окружающей среды не проводится».

Микробиологический контроль стерильности проводится в ЛПУ 1 раз в месяц, центром Госсанэпиднадзора - 1 раз в квартал.

Исследование микробной обсемененности воз­душной среды

Бактериологические исследования воздушной среды предусматривают: - определение общего содержания микробов в 1 ку­бометре воздуха;

• определение содержания золотистого стафилокок­ка в 1 кубометре воздуха.

Отбор проб воздуха проводят в следующих помещениях:

- оперблоках;

- перевязочных;

- послеоперационных палатах;

- отделениях и палатах реанимации и интенсивной те­рапии и других помещении, требующих асептиче­ских условий.

Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова.

Скорость протягивания воздуха составляет 25 л/мин, количество пропущенного воздуха должно составлять 100 л для определения общего содержания бактерий и 250 л для определения наличия золотистого стафилококка. Ис­следование воздуха седиментационным методом допуска­ется в исключительных случаях. В протоколе количество плесневых грибов указывают отдельно.

Примечание. При переносе аппарата Кротова из одного помеще­ния в другое его поверхность обрабатывают дезинфицирующим рас­твором. Столик, внутренние стыки и крышку прибора с внутренней и внешней стороны протирают спиртом 70°.

Критерии оценки микробной обсемененности воздуха в хирургических клиниках - операционные до начала работы - не выше 500 колоний/м³, во вре­мя работы - не выше 1000 колоний/м³; и в том, и в другом случае в 250 л воздуха патогенного стафило­кокка не должно быть.

Контроль стерильности инструментов (шприцы, иглы, системы переливании крови многократного использования, зонды, бужи и другие изделия из ре­зины), перевязочного материала, операционного бе­лья, рук хирургов и кожи операционного поля (вы­борочно) - 1 раз в неделю.

Забор проб на стерильность проводит операци­онная сестра в стерильные емкости, с соблюдени­ем строжайших правил асептики непосредственно перед проведением операции.

Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов. Марлевой салфеткой, смоченной в физиологическом растворе, протирают ладони, околоногтевые и меж­пальцевые пространства обеих рук. Отмывную жид­кость засевают на 2 чашки Петри с МПА, а марле­вую салфетку - в 0,5% сахарный бульон.

Кожа и руки стерильны при отсутствии роста микроорганизмов как на твердой, так и на жидкой питательной среде. Приказ Министерства здраво­охранения РФ № 345 от 26.11.97г. «О совершенство­вании мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций в акушерских стационарах».

Ниже приведены основные положения приказа № 345. «Микробиологический мониторинг – важный параметр эпидемиологического надзора, пресле­дующий цель определить этиологическую структуру ВБИ, выявить циркуляцию госпитального штамма и оценить качество противоэпидемического режима.

Микробиологический мониторинг осуществля­ется лечебно-профилактическими учреждениями, оперативными отделами центров Госсанэпиднадзора, дезинфекционными станциями. Обследование пер­сонала на условно-патогенную и патогенную микро­флору осуществляется только по эпидемиологиче­ским показаниям. Обследование медицинского пер­сонала на носительство золотистого стафилококка при приеме на работу и в процессе профессиональ­ной деятельности в плановом порядке не производится».

«Родильный дом (отделение) не менее одного раза в год должно закрываться на проведение плано­вой дезинфекции, в том числе при необходимости - для косметического ремонта. Открытие стациона­ра, закрывавшегося по эпидпоказаниям, допускается только после получения отрицательных результатов лабораторного контроля окружающей среды и раз­решения центров Госсанэпиднадзора. В случаях пла­нового закрытия обследование объектов окружаю­щей среды не проводится, разрешение органов ГСЭН на открытие не требуется».

«Микробиологический контроль стерильности проводится в лечебно-профилактическом учрежде­нии 1 раз в месяц, центрами Госсанэпиднадзора или дезинфекционными станциями - 1 раз в квартал.

Исследованию подлежат:

• лекарственные формы для инъекций,

• лекарственные формы для обработки слизистых обо­лочек и ухода за кожей новорожденных,

• растворы для питья,

• шовный материал,

• хирургические перчатки,

• наборы для первичной и повторной обработок ново­рожденных,

• материалы для новорожденных в стерилизационных коробках (биксах),

• материалы для операционной в стерилизационных коробках (биксах),

• индивидуальные комплекты для приема родов,

• зонды, катетеры,

• другие изделия медицинского назначения.

Санитарно-бактериологические исследования объектов окружающей среды проводятся в следую­щих случаях:

• по эпидемиологическим показаниям,

• при неудовлетворительном соблюдении санитар­но-гигиенического и противоэпидемического режи­мов в акушерском стационаре (на усмотрение цен­тров Госсанэпиднадзора),

• с целью контроля качества заключительной дезин­фекции перед открытием акушерского стационара, закрывшегося в связи с неблагополучной эпидемио­логической обстановкой.

Данные бактериологического обследования но­ворожденных и родильниц с диагнозом ВБИ, а также медицинского персонала (больных и носителей) в совокупности с результатами санитарно-бактериологических исследований позволяют определить штаммы микроорганизмов, циркулирующих в стационаре.

В соответствии с «Методическими указаниями по микробиологическому контролю в аптеках» (1985), действующими до настоящего времени, отбор проб для бактериологического исследования (силами центров ГСЭН) различных объектов и аптеках про­изводится не менее 2 раз в квартал; при этом пробы воздуха отбирают в следующих помещениях: асеп­тическом блоке, стерилизационной, ассистентской, фасовочной, комнате дефектара и материальной, мо­ечной и в зале обслуживания.

Отбор проб воздуха производят при соблюдении следующих условий:

• чистое подготовленное к работе помещение;

• закрытые форточки и двери;

• определение в помещении процента относительной влажности воздуха;

• уровень высоты отбора проб воздуха соответствует высоте рабочего стола;

• не ранее, чем за 30 мин. после влажной уборки по­мещения.

Пробы воздуха отбирают аспирациопным мето­дом с помощью приборов для бактериологического анализа воздуха - прибор Кротова в том числе.

Для определения общего содержания бактерий в 1м³ отбор производят на 2% питательный агар, раз­литый и чашки по 12-15 мл. Для определения золо­тистого стафилококка используют желточно-солевой агар, для определения плесневых и дрожжевых гри­бов - среду Сабуро.

Критерии оценки микробной обсемененности воздуха помещений аптек: общее количество коло­ний микроорганизмов в 1 m³ воздуха в асептическом блоке, стерилизационной, ассистентской, фасовоч­ной, дефектарной, материальной после работы должно быть не выше 1000 (до работы 500-750, со­ответственно), а золотистого стафилококка, плесне­вых и дрожжевых грибов не должно быть в 250 л воздуха ни до, ни после работы. В моечной ОМЧ во время работы должно быть не выше 1000, золотисто­го стафилококка не должно быть в 250 л воздуха, ко­личество плесневых и дрожжевых грибов до 12/м³ воздуха. В зале обслуживания аптек во время работы ОМЧ должно быть не выше 1500, количество золо­тистого стафилококка допускается до 100 в 1 м , а плесневых и дрожжевых грибов - до 20 в 1 м³ воздуха.

Известно, что причиной пирогенности дистилли­рованной воды, предназначенной для изготовления инъекционных растворов, а также самих инъекцион­ных растворов, в подавляющем большинстве случаев являются грамотрицательные (пирогенообразующие) микроорганизмы.

Их предельно допустимое содержание в 1 мл дистиллированной воды, используемой для приго­товления инъекционных растворов, нормируется на уровне 5 КОЕ, при обшем количестве 15-20 КОЕ/мл, а растворы глюкозы (5-10-25-40%), натрия хлорида (0,9%) до стерилизации, но не позднее 1-1,5 часов после изготовления должны содержать не более 50 особей в 1 мл, из них пирогенных - не более 10. При этом содержание кишечной палочки и протея в дистиллированной воде и других лекарственных формах не допускается.