- •© БашГу, 2013 содержание
- •Введение
- •Выделение нуклеиновых кислот
- •Выделение днк
- •Этап подготовки пробы биологического материала
- •Методы выделения днк
- •Основные этапы методов выделения днк
- •Выделение днк фенол-хлороформной экстракцией
- •Методика выделения днк методом фенол-хлороформной экстракции из лейкоцитов крови (Mathew c.C., 1984).
- •Выделение днк с помощью сорбента
- •Выделение днк с помощью бумажных фильтров
- •Выделение рнк
- •Выделение рнк из цельной крови
- •Методика выделения рнк из цельной крови (с использованием набор реагентов ооо нпф «Литех»):
- •Выделение рнк из тканей с использованием тризола
- •Количественный и качественный анализ нк
- •Полимеразная цепная реакция синтеза днк и ее модификации
- •Механизм, компоненты и методика проведения пцр Механизм пцр
- •Этапы пцр
- •Компоненты реакционной пцр-смеси
- •Основные принципы работы пцр-лаборатории
- •Рекомендации по оборудованию лаборатории
- •Рекомендации по подготовке к постановке пцр
- •Стандартная методика для проведения пцр
- •Методика проведения пцр
- •Проблема контаминации
- •2.2. Пцр в режиме реального времени
- •Принципы пцр в «реальном времени»
- •Различные типы пцр «в реальном времени»
- •Использование интеркалирующих агентов
- •Использование меченых флуоресцентными агентами олигонуклеотидных проб, комплементарных участку пцр-продукта
- •Выщепление 5' концевой метки (TaqMan Assay).
- •Использование зондов с комплементарными концевыми последовательностями (molecular beacons)
- •Применение 2-х зондов с резонансным переносом энергии (LightCycler assay)
- •Сравнение методов sybr Green и TagMan
- •Материально-техническое обеспечение (Используемое оборудование и материалы для проведения пцр «в реальном времени»)
- •Основные этапы работ
- •Базовые параметры реакции
- •Базовый протокол TaqMan амплификации
- •Проведение полимеразной цепной реакции в реальном времени
- •Способ учета результатов
- •Анализ результатов
- •Пример протокола реакции для амплификатора Bio-Rad cfx 96
- •Пцр с обратной транскрипцией
- •Протокол проведения процедуры обратной транскрипции
- •Электрофорез днк
- •Методика заливки агарозного геля
- •Определение концентрации и качества днк/мРнк в агарозном геле
- •Полиморфизм длины рестрикционных фрагментов (пдрф-анализ)
- •5. Анализ конформационного п олиморфизма однонитевой днк (sscp-анализ)
- •6. Секвенирование
- •Порядок подготовки образцов днк к секвенированию.
- •1Мкл буфер BigDye
- •Современные методы полногеномного секвенирования днк
- •5. Метод биочипов
- •Основные технологии производства днк-микрочипов
- •Оценка экспрессии генов с помощью днк микрочипов (на примере Affymetrix GeneChip)
- •Полногеномное генотипирование полиморфных локусов с помощью микрочипов высокой плотности (на примере Illumina Human610-Quad BeadChip)
- •Список использованной литературы
- •Приготовление рективов для выделения днк Приготовление лизирующего буфера
- •Приготовление Трис-нСl 2 m (pH 7,6)
- •Приготовление 0,5 м эдта (рН 8,0)
- •Приготовление Soline (эдта)
- •Приготовление 5 м NaCl
- •Приготовление 10% sds (додецил сульфат натрия)
- •Приготовление фенола
- •Компоненты и реактивы для прведения электрофореза днк
- •Приготовление реактивов, неоходимых при проведении sscp-анализа
- •Триплетный генетический код
- •Биолоические базы данных
Приготовление фенола
Этап |
Реагент |
Количество |
I Расплавить твердый фенол при 680 в водяной бане |
||
II |
8-оксихинолин |
до конечной концентрации 0,1% (антиоксидант) |
III |
Буфер (Трис-HCl pH 8,0 в смеси 0,2% 6-меркаптоэтанола) |
насыщают равным объемом до рН 7,6 |
IV Хранить не более 1 месяца при t = +40C |
||
Готовый забуференный фенол должен четко разделяться на два слоя. Для очистки ДНК пипеткой осторожно набирать нижний слой.
Приложение 2
Возможные проблемы при постановке ПЦР и способы их решения
Проблема |
Возможная причина |
Возможные способы решения |
Шмер по дорожке с гелем |
1.Деградирует продукт
2. Неспецифичная амплификация
3. Избыток ДНК-матрицы |
1. Найдите источник загрязнения нуклеазами; убедитесь, что материал не хранился долго и повторите ПЦР; 2. Подберите более специфичные праймеры или более оптимальные условия реакции; 3.Возьмите меньшие количества ДНК-матрицы. |
Не специфические полосы по дорожке на геле
|
1. Неспецифическая амплификация
2. Избыток ДНК-матрицы |
1. Подберите более специфичные праймеры или более оптимальные условия реакции; 2. Возьмите меньшие количества ДНК-матрицы. |
Полоса продукта слабая или отсутствует |
1. Слабо покрашен гель
2. Отсутствует ДНК-матрица в пробе 3. Деградировали праймеры 4. Праймеры не отжигаются на ДНК-матрице 5. Неправильные условия проведения ПЦР 6. Вышел из строя амплификатор. |
1. Добавьте в агарозу больше бромистого этидия; 2. Добавьте ДНК-матрицу
3. Синтезируйте новые праймеры; 4. Подберите более специфичные праймеры;
5. Подберите более оптимальные условия ПЦР; 6. Замените амплификатор |
Приложение 3
Компоненты и реактивы для прведения электрофореза днк
Количество реагентов при приготовлении ПААГ
Компоненты |
На 15 мл |
На 30 мл |
На 40 мл |
На 45 мл |
На 50 мл |
7% ПААГ |
|||||
30% акриламид |
3,5 мл |
7 мл |
9,3 мл |
10,5 мл |
11,7 мл |
10хТВЕ |
1,5 мл |
3 мл |
4 мл |
4,5 мл |
5 мл |
ТЕМЕД |
15 мкл |
30 мкл |
40 мкл |
45 мкл |
50 мкл |
10% ПСА |
133 мкл |
266 мкл |
355 мкл |
400 мкл |
443 мкл |
Н20 |
до 15 мл |
до 30 мл |
до 40 мл |
до 45 мл |
до 50 мл |
8% ПААГ |
|||||
30% акриламид |
4 мл |
8 мл |
10,7 мл |
12 мл |
13,3 мл |
10хТВЕ |
1,5 мл |
3 мл |
4 мл |
4,5 мл |
5 мл |
ТЕМЕД |
15 мкл |
30 мкл |
40 мкл |
45 мкл |
50 мкл |
10% ПСА |
133 мкл |
266 мкл |
355 мкл |
400 мкл |
443 мкл |
Н20 |
до 15 мл |
до 30 мл |
до 40 мл |
до 45 мл |
до 50 мл |
10% ПААГ |
|||||
30% акриламид |
5 мл |
10 мл |
13,3 мл |
15 мл |
16,7 мл |
10хТВЕ |
1,5 мл |
3 мл |
4 мл |
4,5 мл |
5 мл |
ТЕМЕД |
15 мкл |
30 мкл |
40 мкл |
45 мкл |
50 мкл |
10% ПСА |
133 мкл |
266 мкл |
355 мкл |
400 мкл |
443 мкл |
Н20 |
до 15 мл |
до 30 мл |
до 40 мл |
до 45 мл |
до 50 мл |
Приготовление 30% акриламида
Компоненты |
На 100 мл |
На 200 мл |
Акриламид |
29 г |
58 г |
Метиленбисакриламид |
1 г |
2 г |
Приготовление буфера ТВЕх10
Компоненты |
На 1 л |
На 0,5 л |
Трис |
108 г |
54 г |
Борная кислота |
55 г |
27,5 г |
0,5 М ЭДТА рН=8 (или сухой) |
40 мл (9,3 г) |
20 мл (4,65 г) |
Приготовление буфера ТАЕх10
Компоненты |
На 1 л |
На 0,5 л |
Трис |
48,4 г |
24,2 г |
ЛУК |
11,2 мл |
5,6 г |
0,5 М ЭДТА рН=8 |
20 мл |
10 мл |
рН доводим до 7,8 ледяной уксусной кислотой |
||
Приготовление 0,09% растора AgNO3
Реагент |
Количество |
AgNO3 |
1,8 г |
Н2О |
до 2000 мл |
Приготовление формалин-щелочного раствора
Реагент |
Количество |
40% раствор формалина |
15 мл |
NaOH сухой |
15 г |
Н2О |
до 500 мл |
Приложение 4
Рестриктазы и сайты узнавания
Фермент типа II |
Сайт узнавания |
Симметричный (N=6) |
|
Bal I |
TGG|CCA |
Bam HI |
G|GATCC |
Bcl I |
T|GATCA |
Bgl II |
A|GATCT |
Eco RI |
G|AATTC |
Hin dIII |
A|AGCTT |
Hpa I |
GTT|AAC |
Kpn I |
GGTAC|C |
Pst I |
CTGCA|G |
Pvu II |
CAG|CTG |
Sma I |
CCC|GGG |
Sac I |
GAGCT|C |
Sac II |
CCGC|GG |
Sal I |
G|TCGAC |
Xba I |
T|CTAGA |
Xho I |
CTC|GAG |
Вырожденный симметричный (N=6) |
|
Acc I |
GT|(A/C)(G/T)AC |
Ava I |
C|PyCGPuG |
Hae I |
(A/T)GG|CC(T/A) |
Hae II |
PuGCGC|Py |
Hgi AI |
G(T/A)GC(T/A)|C |
Hin dII |
GTPy|PuAC |
Симметричный (N=5) |
|
Asu I |
G|GNCC |
Ava II |
G|G(A/T)CC |
Eco RII |
|CC(A/T)GG |
Hin fI |
G|ANTC |
Симметричный (N=4) |
|
Alu I |
AG|CT |
Fnu DII |
CG|CG |
Hae III |
GG|CC |
Hha I |
GCG|C |
Hpa II |
C|CGG |
Mbo I |
|GATC |
Taq I |
T|CGA |
Симметричный метилированный (N=4) |
|
Dpn I |
CmATC |
Msp I |
C(mC/C)GG |
Приложение 5
