- •14.Методы временной остановки кровотечения……………………………………………………….16-19
- •15. Наложение мягких повязок на голову, шею, туловище, конечности……………………………19-23
- •19. Раны………………………………………………………………………………………………………..27-30
- •1. Изготовление перевязочного материала
- •Изготовление шариков:
- •Изготовление салфеток
- •Изготовление тампонов
- •3. Укладка в стерилизационные коробки операционного белья, одежды, перевязочного материала, печаток
- •Изготовление турунд
- •2.Изготовление дренажей (марлевых, резиновых, комбинированных, трубчатых)
- •Укладывание материала в бикс
- •Работа со стерильным биксом
- •4. Предоперационная обработка рук
- •5. Облачение в стерильный халат и перчатки медсестры и врача
- •1. Надевание стерильного халата медсестрой.
- •2. Надевание стерильных перчаток медсестрой.
- •3. Надевание стерильной операционной одежды на врача
- •4. Надевание стерильных перчаток на руки врача
- •6.Техника накрытия стерильного инструментального стола
- •7.Предстерилизационная обработка хирургических инструментов
- •Предстерилизационная очистка инструментария
- •Обеззараживание инструментария
- •Контроль качества предстерилизационной очистки
- •8.Стерилизация резиновых перчаток, трубок, зондов, дренажей, катетеров
- •Подготовка парового стерилизатора и порядок работы
- •Стерилизация инструментария воздушным методом (в сухожаровых шкафах)
- •Химическая (влажная) стерилизация
- •9. Осуществление санитарной обработки пациента при приеме в хирургический стационар
- •10. Осуществление бритья операционного поля
- •11.Обработка операционного поля йодонатом, йодопироном, хлоргексидина-биглюконатом
- •12. Осуществление транспортировки пациента в операционную и обратно
- •13. Транспортировка больных с различными видами хирургической патологии в лпу
- •14.Методы временной остановки кровотечения
- •15.Наложение мягких повязок на голову, шею, туловище, конечности.
- •Наложение и снятие гипсовой повязки
- •17. Применение эластичных бинтов и трикотажа на нижние конечности
- •Их основная задача – поддержка кровеносных сосудов ног и эффективное и безопасное распределение давления на них:
- •18.Наложение транспортных шин. Алгоритм.
- •Наложение шины Дитерихса при переломе бедренной кости
- •Применение шины Крамера при переломах
- •Применение шины Крамера при переломе предплечья
- •Применение шины Крамера при переломе костей голени
- •19.Раны
- •1.Снятие узлового кожного шва.
- •1. Показания.
- •3 Оснащение.
- •4 Модель обстоятельств и поведения медсестры
- •5 Алгоритм действия
- •2. Осуществление туалета раны
- •3.Инструментальная перевязка гнойной раны
- •4.Асептическая повязка на рану
- •20.Экстренная профилактика столбняка
- •Перед введением псс по методу Безредко
- •21.Введение антирабических препаратов
- •22.Наборы инструментов для различных операций Алгоритм.
- •Набор инструментов для первичной хирургической обработки раны
- •Набор инструментов для вскрытия абсцесса
- •Набор инструментов для трахеостомии
- •Набор инструментов для скелетного вытяжения
- •Набор инструментов для трепанации черепа
- •Набор инструментов для операции аппендэктомии
- •23. Уход за стомами
- •Уход за цистостомой, алгоритм
- •Техника выполнения ухода за цистостомой
- •Уход за трахеостомой, алгоритм
- •Техника выполнения ухода за трахеостомой.
- •24. Осуществление подготовки пациента к эндоскопическим исследованиям
- •Колоноскопию проводит врач, медсестра ассистирует.
- •25. Осуществление подготовки пациента к исследованиям Подготовка больного к ирригоскопии
- •Подготовка больного к холецистографии и холангиографии
- •Подготовка больных и проведение рентгенологических исследований желудка и тонкого кишечника
- •Подготовка к магнитно-резонансной томографии
- •Обзорная рентгенография мочевых путей
- •26. Определение группы крови аво
- •2 Оснащение:
- •3 Проведение манипуляции
- •4 Возможные ошибки:
- •5 Критерии оценивания:
- •27.Определение группы крови с цоликлонами анти-а и анти-в
- •2 Оснащение:
- •3 Техника манипуляции:
- •4 Возможные ошибки:
- •5 Критерии оценивания:
- •28.Определение резус-фактора со стандартной сывороткой анти-резус.
- •3 Техника манипуляции:
- •4 Возможные ошибки:
- •5 Критерии оценивания:
- •29.Определение резуснои принадлежности крови в реакции прямой агглютинации на плоскости цоликлоном анти - д (супер)
- •30.Проведение пробы на индивидуальную совместимость по группе крови
- •2 Оснащение:
- •3 Техника манипуляции:
- •4 Возможные ошибки:
- •5 Критерии оценивания:
- •31.Проведение пробы на индивидуальную совместимость по резус-фактору.
- •2 Оснащение:
- •3 Техника манипуляции:
- •4 Возможные ошибки:
- •34. Пункции
- •5 Критерии оценивания:
- •32.Выявление признаков непригодности крови к переливанию
- •35. Составление наборов инструментов для проведения
- •36. Подготовка пациента к обезболиванию
- •37. Выполнение премедикации по назначению врача
- •38. Наблюдение за пациентом в ходе обезболивания
- •39. Диеты
- •40.Уход за больным перед операцией в хирургическом отделении
- •41.Наблюдение и уход за больными после операции
- •42.Наблюдение и уход за больными после операций на органах грудной и брюшной полостей
- •43.Общий уход и наблюдение за больными с ранами
- •44.Непрямой массаж сердца
- •Показаниями к массажу сердца являются все случаи остановки сердца.
- •45.Восстановление проходимости дыхательных путей
- •46. Искусственная вентиляция легких ивл необходимо проводить в случаях, когда дыхание отсутствует или нарушено в такой степени, что это угрожает жизни пострадавшего.
- •47. Сбор мокроты на атипичные клетки, оценка результатов
7.Предстерилизационная обработка хирургических инструментов
Громадное значение имеет обработка инструментов после употребления, так как в остатках крови могут сохраняться споры микробов и вирус инфекционного гепатита даже после стерилизации.
Предстерилизационная очистка инструментария
Оснащение. Моющий раствор (5 г моющего средства «Биолот» или «биомы» + 995 мл воды), металлический электрокипятильник, ершик, фартук, маска, очки, резиновые перчатки, водяной термометр.
1. Вымойте и высушите руки.
2. Наденьте фартук, маску и резиновые перчатки.
3. Приготовьте моющий раствор, подогрейте его до 40 ° С.
4. Опустите на 15 мин разобранные инструменты, затем с помощью ершика выполните ручную очистку или при возможности – механизированную очистку.
5. Совершите промывку инструментов под проточной водой в течение 5 мин.
6. Совершите ополаскивание инструментов дистиллированной водой в течение 30 с.
7. Высушите инструменты в сушильном шкафу при температуре 85 ° С до полного исчезновения влаги.
8. Проверьте качество предстерилизационной очистки на наличие остатков крови (азопирамовой пробы) и на наличие остатков основных компонентов (фенолфталеиновой пробы).
Осторожно обращайтесь с острыми предметами.
Обеззараживание инструментария
Оснащение. Два закрытых сосуда с соответствующим раствором дезинфицирующего средства, резиновые перчатки, маска, фартук, тупфер марлевый на зажимы. 1. Наденьте маску, фартук, резиновые перчатки.
2. Раскройте инструмент, с помощью тупфера на зажимы промойте инструмент в первом сосуде дезинфицирующего раствора, обратите внимание на замки, насечки, зарубки.
3. В раскрытом виде инструмент погрузите во второй сосуд с дезинфицирующим раствором.
4. После соответствующей экспозиции инструмент тщательно вымойте под проточной водой, разложите на чистой простыне в раскрытом виде и высушите при комнатной температуре.
5. Соберите высушенный инструментарий и отправьте в ЦСО (централизованное стерилизационное отделение).
Во всех случаях дезинфекционный раствор можно использовать до изменения прозрачности и цвета, но не более суток. Осторожно обращайтесь с острыми инструментами.
Контроль качества предстерилизационной очистки
Технология амидопириновой пробы : смешивают в равных количествах (по 2-3мл) 5% спиртовый раствор амидопирина, 30% раствор перекиси водорода.
На изделия наносят смесь, при наличии остатков крови появляется сине-зеленое окрашивание – проба положительная.
Постановка фенолфталеиновой пробы: 1% спиртовый раствор
фенолфталеина наносят в количестве 1-2 капель на изделие, в присутствии остатков моющих средств появляется розовое окрашивание.
Использование новых дезинфицирующих средств и их комбинаций, таких, как лизоформин-3000, лизоформин-специаль, дезоформ, бланизол, амоцид, позволяет в ряде случаев соединить два этапа в один и сократить время обработки инструментов.
Методика постановки азопирамовой пробы:
1. Рабочим раствором азопирама обработать обследуемое изделие: протереть ватным тампоном, смоченым реактивом, или нанести несколько капель реактива на обследуемое изделие с помощью пипетки. Так, в шприц с помощью пипетки капаем несколько капель реактива и через 30 секунд выливаем его на марлевую салфетку или ватный тампон.
2. Для проверки качества очистки игл реактив набрать в чистый, без следов коррозии шприц, и, попеременно меняя иглы, через них пропустить реактив, выдавливая 3-4 капли на салфетку.
3. Количество реактива, которое вводят в середину других полых изделий, зависит от величины изделия.
4. Контролю подвергается 1% изделий одного назначения, но не меньше 3-5 единиц из партии.
Определение индикации загрязнения:
1. Азопирам выявляет наличие гемоглобина, пероксидаз растительного происхождения (растительных излишков), хлорамина, хлорной извести, моющих средств.
2. При наличии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 минуту после контакта реактива с грязной частью, появляется окрашивание, сначала фиолетовое, затем в течение нескольких секунд переходит в розово-сероватое или в буроватое. Окрашивание, которое наступило позднее, чем через 1 минуту после нанесения реактива на предмет, не засчитывается.
3. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на обследуемых предметах ржавчины, хлорсодержащих окислителей. В остальных случаях окрашивание – розово-сероватое.
4. Обследуемые изделия должны быть комнатной температуры (не выше 25oC). Не должны подвергаться проверке горячие изделия.
5. Не держите раствор при ярком освещении и при высокой температуре.
6. Рабочий раствор (азопирам с перекисью водорода) используют в течение 1-2 часов. При более долгом стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание раствора. При t воздуха выше 25oC рабочий раствор используется в течение 30-40 минут.
7. После проверки независимо от результата удалите излишки азопирама с обследованных предметов, сполосните их водой, а потом повторите предстерилизационную очистку этих изделий.
Бензидиновая проба, применяется для открытия небольших количеств крови,гноя., в испражнениях и на хирургических инструментах.
Для производства пробы по Грегерсену (Gregersen) на исследуемый инструмент несколькими каплями капают след. раствора: бензидина 0,025 г, перекиси бария—0,1 г,50% уксусной к-ты— 5 куб. см. В случае присутствия крови, хотя бы в виде следов, появляется зеленая окраска. Вследствие большой чувствительности данная проба просто уникальна.
