Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
2_MIKROBIOLOGIYa_ZOO_-_material_k_prakticheski....docx
Скачиваний:
5
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
335 Кб
Скачать
☆

2. Санитарно-бактериологическое исследование кормов.

Отбор проб. Для исследования кормов отбираю среднюю пробу (не менее 1 кг). Средняя проба корма должна по своему составу отображать средний состав имеющихся в наличии кормов, направляемых на исследование. Среднюю пробу готовят из объединенной пробы, объединенную – из точечной пробы, а точечную пробу из партии.

Партия – это определенное количество реализуемого корма, определенное или полученное одновременно.

Точечная проба – это кол-во материала, отобранного одновременно из 1 точки партии.

Объединенная проба – это кол-во материала, полученного путем объединения и перемешивания всех точечных проб, отобранных из одной и той же партии.

Средняя (сокращенная) проба – это представительная часть объединенной пробы, полученная в процессе последовательного деления или сокращения таким образом, чтобы масса или объем были приблизительно такими, какие необходимы для лабораторных проб.

Лабораторная проба – это проба, представленная в плане качества и состояния партии, полученная путем деления сокращенной пробы и предназначенная для исследования.

Взятие средней пробы из разных кормов.

1. Средний образец сена и соломы берут из разных мест партии из расчета на каждые 25 т непрессованного и 50 т прессованного сена - 5 кг, тщательно перемешивают и берут образец весом 1 кг.

2. Среднюю пробу сенажа и силоса составляют из образцов, взятых из разных мест силосной ямы (сенажа), в количестве 1 кг, упаковывают в пергаментную бумагу, наклеивают этикетку с указанием места отбора, даты и наименования силоса.

3. Зерновой фураж (комбикорм, отруби и т.д.), хранящиеся в складах и амбарах насыпью, при высоте насыпи 1,5 м отбирают вагонным или амбарным щупом, при большой высоте насыпи - щупом с навинчивающимися штангами, перед отбором проб поверхность зерна в складе разделяется на секции площадью примерно 100 м, а отруби по 4-5 м каждая и отбирают пробы в пяти точках поверхности насыпи из каждого слоя (верхнего, среднего, нижнего).

4. Жидкие корма (барду, дробину) берут после тщательного перемешивания и посылают в чистых стеклянных банках, на которые наклеивают этикетку с характеристикой посылаемого корма.

5. От партии жмыхов и шротов, хранящихся насыпью, пробу отбирают в шахматном порядке, через 2 метра, из трех слоев.

Подготовка проб. Подготовка проб включает: перемешивание, дробление, размалывание, разрезание, гомогенизацию (в зависимости от вида корма).

Лабораторное исследование кормов.

Исследование кормов включает:

1) Определение ботанического состава (например, сено – на бобовые, злаковые, вредные, ядовитые и прочие растения и рассчитывают их соотношение в %).

2) Органолептический анализ: внешний вид, цвет, запах, сыпучесть.

3) Физико-химический анализ: pH, определение содержания воды, белков, жиров, клетчатки, витаминов, микроэлементов и др.

4) Бактериологическое исследование: определение общей бактериальной обсемененности, наличие патогенной и условно-патогенной микрофлоры, определение и подсчет БГКП,

5) Микологическое исследование: выделение микроскопических грибов.

6) Химико-токсикологическое исследование: определение микотоксинов, нитритов, нитратов и др.

Бактериологическое исследование кормов.

Определение общего количества микробных клеток. В стерильную пробирку помещают 1 г корма, взятого из среднего образца (взятие корма для навески одноразовое), добавляют 9 мл физиологического раствора и тщательно встряхивают (получают разведение 1 : 10). Из полученной взвеси готовят последующие разведения (1 : 100, 1 : 1000, 1 10000, 1 ; 100000, 1 : 1 000 000). После оседания взвешенных частиц из верхнего слоя жидкости делают посевы.

Для количественного учета микробного обсеменения в стерильные бактериологические чашки вносят по 1 мл каждого разведения и заливают 10-15 мл стерильного, расплавленного и охлажденного до температуры 44-45°С мясо-пептонного агара (МПА). Осторожно покачивая чашки, засеянный материал равномерно распределяют в агаре. После застывания среды чашки помещают (вверх дном) в термостат при температуре 37 С на 24-48 часов. Далее проводят подсчет выросших колоний только в чашках, где содержатся не более 300 колоний. Результаты, полученные при подсчете колоний, умножают на разведения, суммируют и определяют количество микробов в 1 г корма.

Исследования на энтеропатогенные типы кишечной палочки. 50 г корма помещают в колбу, содержащую 500 мл стерильного физиологического раствора, встряхивают в течение 30 минут и из полученной взвеси стерильными пипетками готовят разведения 1:100, 1:1000, 1:10000, 1:100000, 1:1000000. По 1 мл каждого разведения вносят в пробирки (по выбору) со средами Эйкмана, Кесслера или Кода. Посевы помещают в термостат при температуре 43°С для первых двух сред и при 37°С - для последней. Через 24 часа учитывают рост: на среде Эйкмана - по помутнению среды и образованию газа, на средах Кесслера и Кода - по изменению цвета сред. Из пробирок, где наблюдается рост микробов, производят посев на плотные среды Эндо, Левина. Параллельно с посева делают мазки по Граму из пробирок и чашек с характерными выросшими колониями. Кишечная палочка – грамотрицательная (розово-красная), палочковидная, среднего размера, с ровными закругленными концами. Далее проводят биохимическую идентификацию на средах Гисса, при помощи серологических реакций и проводят другие тесты. Для определения патогенности выделенной кишечной палочки производят заражение мышей.