- •Глава 6. Субстраты для выращивания растений по малообъемной технологии
- •Глава 7. Питание растений при малообъемной технологии
- •Глава 8. Технология выращивания огурца в защищенном грунте
- •Глава 9. Технология выращивания томата в закрытом грунте
- •Глава 10. Технология выращивания перца, баклажана, зеленных культур
- •Глава 11. Система защиты растений от болезней и вредителей в теплицах
- •Глава 12. Технология выращивания цветочных культур в защищенном грунте
- •Факторы среды выращивания 407
- •Глава 13. Современные системы орошения в растениеводстве открытого грунта
- •Глава 14. Передовой опыт выращивания овощных культур у ведущих предприятиях Украины
- •Глава 15. Опыт работы зарубежных фирм в хозяйствах Украины
- •1.1 Развитие прогрессивных методов выращивания растений
- •1.2 Биологические особенности овощных культур
- •1.2.3 Особенности различных овощных культур
- •1.2.4 Периоды выращивания
- •1.3. Способы выращивания
- •1.4 Пищевая и целебная ценность овощей, выращиваемых в закрытом грунте
- •1.4.1 Зеленные культуры
- •2.1 Классификация теплиц
- •2.2 Типовые проекты теплиц
- •2.3 Строительство и реконструкция теплиц
- •2.4 Теплицы для специализированных хозяйств
- •2.5 Теплицы для овощеводов-любителей ооо "агрисовгаз"
- •2.6 Теплицы для небольших фермерских хозяйств производства ооо "агрисовгаз"
- •2.7 Посевной и посадочный материал овощных культур
- •Вегетационного периода
- •2.8 Основные культурообороты для тепличных сооружений
- •3.1 Понятие о комплексе внешних условий
- •3.2 Роль микроклимата в формировании урожая
- •3.3 Световой режим
- •3.4 Электродосвечивание
- •3.5 Тепловой режим
- •3.6 Режим влажности субстрата и воздуха
- •3.7 Воздушно-газовый режим
- •4.1 Требования к тепличным грунтам
- •4.2 Классификация тепличных грунтов
- •4.3 Свойства тепличных грунтов
- •4.4 Режим питания овощных культур при выращивании на различных грунтах
- •4.5 Известкование почвы, приготовление компостов, внесение удобрений
- •4.6 Грунты для рассады
- •5.1 Методы гидропоники (по тараканову г. И., 1982)
- •5.1.1 Агрегатопоника
- •5.1.2 Водная культура
- •5.1.3 Хемопоника
- •5.1.4 Ионитопоника
- •5.1.5 Аэропоника
- •5.2 Способы подачи питательного раствора при гравийной культуре
- •5.3 Субстраты для выращивания растений методом гравийной культуры
- •5.4 Питательные растворы для гравийной культуры и их корректировка
- •5.5 Концентрация питательного раствора
- •5.6 Кислотность питательного раствора
- •5.7 Питательные растворы для рассады при гравийной культуре
- •5.8 Питательные растворы для огурца на щебне
- •5.9 Питательные растворы для томата на щебне
- •5.10 Контроль за составом питательного раствора на щебне
- •6.1 Верховой торф
- •6.2 Минеральная вата
- •6.3 Перлит
- •6.4 Цеолит
- •6.5 Новый тепличный субстрат - кокос
- •6.6 Основная заправка торфяного и торфоперлитового субстратов
- •7.1 Роль и значение элементов питания
- •7.4 Оптимизация условий питания тепличных растений
- •7.2 Требования к качеству воды для капельного полива, методика корректировки питательного раствора в зависимости от состава воды
- •7.3 Питательные растворы
- •7.5 Некорневое питание
- •7.6 Контроль питания растений по химическому составу листьев
- •7.7 Определение обеспеченности питательными элементами растения по внешнему виду
- •Некрозы
- •Ткань не некротическая
- •Повреждение местное. Ткань некротическая
- •8.1. Особенности технологии
- •8.1 Типы цветков
- •8.1.1 Гибриды огурца для выращивания в зимне-весенней культуре
- •8.1.2 Принципы подбора гибридов огурца
- •8.2 Грунтовая культура огурца в теплицах
- •8.3 Схемы формирования растений огурца в защищенном грунте
- •5. Формирование партено- карпических гибридов огурца в летне-осенней культуре.
- •8.3.1 Опыление пчелами
- •8.3.2 Питание и полив растений огурца на тепличных грунтах
- •8.3.3 Сбор урожая
- •8.4 Технологии выращивания партенокарпического огурца в летне-осеннем обороте
- •8.5 Выращивание огурца малообъемным
- •8.6 Особенности технологии выращивания огурца на минеральной вате
- •8.6.2 Температура
- •8.6.4 Полив
- •8.6.5 Электропроводность и рН раствора
- •8.6.6 Корневая система
- •8.6.7 Контроль питания
- •8.7 Особенности технологии тепличных культур на кокосовом субстрате
- •9.1 Гибриды томата для защищенного грунта
- •9.1.1. Гибриды супердетерминантного типа роста
- •9.3 Выращивание рассады томата
- •9.4 Культура томатов на малообъемных торфяных и торфоперлитных субстратах
- •9.5 Культура томатов на малообъемных минераловатных субстратах
- •9.5.1 Планирование круглогодичного выращивания томатов
- •9.5.2 Выращивание рассады
- •9.5.3. Посадка на постоянное место
- •9.5.5 Уход за растениями
- •9.5.4 Климат теплиц
- •1. Ночной период.
- •2. Утренний период.
- •3. Дневное время.
- •4. Вечерний период.
- •9. 6. Особенности технологии выращивания томатов перспективного гибрида "алькасар" TmC5f2 в продленном обороте
- •9.7. Культура томата на цеолитовом малообъемном субстрате
- •9.8. Использование шмелей для опыления томата
- •10.1 Технология выращивания перца
- •10.1.1. Гибриды и сорта перца сладкого
- •10.1.2 Выращивание рассады
- •10.1.4 Выращивание растений перца
- •10.2 Технология выращивания баклажана
- •10.2.2 Выращивание рассады
- •10.2.5 Периоды выращивания
- •10.2.6 Формировка растений и развитие плодов
- •10.3 Конвейерное выращивание зеленных культур в зимних теплицах способом малообъемной гидропоники
- •10.3.1 Технология конвейерного выращивания салата способом малообъемной культуры в кассетах
- •Иммунологический метод.
- •11.1 Карантинные, профилактические и агротехнические методы защиты
- •11.2 Химический метод защиты растений
- •Механизмы действия препаратов
- •11.3 Иммунологический метод
- •11.4 Интегрированные системы защиты тепличных культур
- •11.5 Биологический метод
- •11.5.1 Биологические методы борьбы с вредителями и болезнями
- •11.5.2 Использование желтых клеевых ловушек (жлк)
- •11.6 Болезни огурца и томата 11.6.1 вирусные болезни огурца
- •Заболевания огурцов передаваемые семенами
- •Заболевания огурцов, распространяемые тлями
- •11.6.2 Грибные болезни огурца
- •11.6.3 Вирусные заболевания томата
- •Заболевания томатов передаваемые семенами
- •Заболевания томатов, передаваемые тлями
- •11.6.4. Бактериальные заболевания томатов
- •11.6.5 Физиологические болезни томата
- •11.7 Вредители огурца и томата
- •11.7.1. Видовой состав тлей, поражающих растения овощных культур в защищенном грунте
- •11.8 Вредители и болезни перца
- •11.9 Вредители и болезни баклажана
- •Физиологические заболевания
- •11.10 Вредители и болезни салата
- •Вредители.
- •11.11 Техника безопасности при работе в культивационных сооружениях
- •12.1 Розы выгоночные
- •12.1.1 Виды посадочного материала
- •12.1.2 Теплицы для культуры роз
- •12.1.2.1 Искусственное освещение
- •12.1.2.2 Обогрев теплицы
- •12.1.3 Культура роз на малообъемных субстратах
- •12.1.4 Физиологические требования растений роз
- •12.1.5 Особенности роста надземной части растений
- •12.1.7 Физиологические особенности развития роз
- •12.1.8 Усвоение питательных веществ
- •12.1.9 Физиологические расстройства
- •12.1.10 Удобрение роз в процессе выращивания
- •12.1.11 Болезни роз
- •12.1.12 Вредители роз
- •12.2 Гвоздика ремонтантная
- •12.2.1 Факторы среды выращивания
- •12.2.2 Грунты и субстраты
- •12.2.3 Удобрение
- •12.2.5 Пасынкование цветущих побегов
- •12.2.6 Схема выращивания и густота посадки гвоздик
- •12.2.7 Сроки фотопериодических подсветок
- •12.2.8 Другие агроприемы, используемые при управляемой технологии
- •12.2.9 Срез цветов
- •12.2.10 Защита растений гвоздики
- •12.2.10.1 Болезни гвоздики
- •12.2.10.2 Вредители гвоздики
- •12.3 Технология выращивания хризантем (метод управляемого цветения)
- •12.3.1 Факторы среды выращивания
- •12.3.3 Сорта хризантем
- •12.3.4 Выращивание посадочного материала
- •12.3.5 Выращивание хризантем
- •12.3.6 Защита хризантем от вредителей и болезней Вирусные болезни.
- •Бактериальные болезни.
- •Грибковые болезни.
- •13.1 Применение капельного полива с фертигацией
- •13.1.1 Почему необходима фертигация?
- •13.2 Современные системы подачи удобрений
- •13.3 Методы фертигации
- •13.4 Особенности удобрения
- •13.5 Доступность элементов питания в почве
- •13.7 Плодовые культуры
- •13.8 Виноград
- •13.9 Ягодные культуры
- •13.10 Распределение удобрений по периодам выращивания
- •13.10.1 Агрохимический анализ почвы
- •12.10.2 Программирование фертигации
- •13.10.3 Поливная норма
- •13.10.4 Определение наименьшей влагоемкости почвы
- •Методы определения поливной нормы
- •12.10.5 Расчет поливной нормы
- •13.12 Эксплуатация капельных оросительных систем
- •13.12.1 Показатель рН раствора удобрений
- •13.12.2 Особенности ирригации культур
- •13.13 Удобрения. Химические аспекты
- •13.14 Регулирование работы оборудования для фертигации
- •13.15 Примеры расчета фертигации
- •Учет факторов плодородия почвы на томате
- •Учет факторов плодородия на винограде
- •14.2 Сооо "крымтеплица"
- •Размещение субстрата
- •Посадка
- •Формирование дополнительного стебля
- •Период сентябрь-октябрь
- •Конец культурооборота
- •14.3 Открытое акционерное общество "комбинат "тепличный" броварского района киевской области
- •Высадка растений на постоянное место
- •Организация труда в теплице
- •Формировка растений
- •14.4 Гп нип агрокомбинат "пуща-водица"
- •14.4.1 Современное производство овощей в агрокомбинате
- •14.4.3 Технология выращивания шампиньона
- •15.1 Голландская фирма ats
- •15.2 A.I.K. Ltd - международные сельскохозяйственные проекты
- •Инженерный сектор
- •Агрономический сектор
- •15.3 Голландская фирма ревахо
- •Защищенный грунт
11.5 Биологический метод
Условия закрытого грунта в наибольшей степени пригодны для применения биологических средств защиты растений. Этому способствует ограниченность и замкнутость пространства, возможность регулирования условий среды (температуры, влажности, освещенности и пр.) и соотношения полезных и вредных организмов.
11.5.1 Биологические методы борьбы с вредителями и болезнями
Работа крупных тепличных комбинатов в течение года практически исключает возможность уничтожения в период зимних холодов устойчивых к пестицидам популяций вредителей и одновременно снижает эффективность профилактических мероприятий, проводимых по окончании вегетации растений. В результате специалисты вынуждены увеличивать кратность обработок растений акарицидами, инсектицидами и фунгицидами, а нередко и норму расхода препарата. Это приводит к накоплению остатков пестицидов и их токсических метаболитов в почве, растениях и плодах, резкому ухудшению условий труда рабочих в теплицах. Поэтому естественен большой интерес, проявляемый к биологическим средствам защиты растений.
Достаточно эффективными оказались энтомофаги и акарифаги, бактериальные и грибные препараты против всех наиболее серьезных вредителей и болезней овощных культур, встречающихся в период их вегетации в теплицах. Даже на существующем уровне методики их массового размножения пригодны для накопления достаточного количества биологических средств в производственных биолабораториях при крупных тепличных хозяйствах.
В практике биологической защиты растений огурца от паутинного клеща в условиях защищенного грунта накоплен значительный опыт применения хищного клеща фитосейулюса (hytoseiulus persimilis A.H.). Используют два способа выпуска фитосейулюса — локальный и массовый. Одним из решающих условий успешного применения локального способа колонизации фитосейулюса является своевременное выявление заселенных вредителем растений. Для этого каждые 7—10 дней проводят обследование теплиц. При обследовании учитывается процент поврежденных растений и степень их поврежденное™.
Выпуск хищного клеща фитосейулюса на заселенные вредителем растения проводят в день их обнаружения. Фитосейулюса выпускают, раскладывая листья или целые растения сои или другой культуры, на которой был накоплен хищник, в очаги вредителя (табл. П. 2; II.3).
Нормы выпуска хищника определяются визуально и зависят от степени поврежденное™ растений. Обычно на одно заселенное вредителем растение раскладывают по 1—6 листьев сои с фитосейулюсом (в среднем 10—60 хищни-
ков). В запущенные очаги хищника выпускают в большом количестве до 140 особей на 1 м2 теплицы, обеспечивая исходное соотношение хищник/жертва 1 : 10, 1 : 20. Обычно фитосейулюс полностью уничтожает вредителя в течение 2—10 дней. После уничтожения вредителя фитосейулюс расселяется в поисках пищи, однако через 4—5 дней после подавления очагов паутинного клеща на листьях можно обнаружить личинки хищника, которые, в случае повторного заселения растений вредителем, могут обеспечить защитный эффект.
В сильно заселенных вредителем теплицах норма выпуска достигает до 250 особей на 1 м2.
У фитосейулюса хищничают взрослые самки и самцы, нимфы и дейто-нимфы. Одна самка фитосейулюса каждые сутки уничтожает в среднем 36 яиц, или 15—20 активных особей, или 5—6 самок паутинного клеща. Максимальная прожорливость хищника отмечается при температуре 25—30°С и относительной влажности воздуха ниже 60%, при 25—30% влажности яйца фитосейулюса погибают.
Установлено также, что применение фитосейулюса в сочетании с химическими препаратами не желательно. Даже слаботоксичные хлорорганичес-кие и карбонатные соединения отличаются высокой токсичностью для фитосейулюса. Фунгициды (беномил, бордоская жидкость, коллоидная сера, каротан, морестан), которые применяются в исключительно экстремальных случаях, относятся к слабо- или среднетоксичной группе препаратов для фитосейулюса.
Высокоэффективен против паутинного клеща, а также тлей, минирующих мух и трипсов инсектоакарицид кишечно-контактного действия — фитоверм — 0,2% к.э. Действующим веществом "препарата является наличие природных авермектинов, продуцируемых почвенным грибом Streptomyces avermitilis (штамм ВНИИСХМ-54). Авермектины — это нейротоксины, которые, проникая в организм кишечным или контактным путем, специфически воздействуют на нервную систему насекомых. Препарат применяют в 0,2% концентрации. Максимальный эффект достигается на 10-й день после обработки. Продолжительность защитного действия не менее 20 дней. Повторную обработку, по мере появления вредителя, необходимо проводить не раньше, чем через 14 дней.
В настоящее время в борьбе с белокрылкой широко применяют паразитическое насекомое энкарзию (Enkarsia Formosa Gahan). Технология применения энкарзии во многом сходна с колонизацией фитосейулюса при защите растений от паутинного клеща.
Важным условием успешного применения энкарзии является своевременное обнаружение очагов белокрылки и выпуск необходимого количества паразита. С этой целью необходимо систематически проводить сплошные обследования теплиц сразу же после посадки рассады огурца и томата на постоянное место. При проведении учета для обнаружения имаго вредителя растения можно легко встряхивать. При выявлении очагов вредителя растения необходимо тщательно просмотреть и, обнаружив яйцекладку или личинок, провести учет численности на 5—10 растениях по диагонали участка,
обозначив растения этикеткой. При проведении учета численности яиц и личинок белокрылки желательно пользоваться лупой 4—7-ми кратного увеличения. После проведения учета численности вредителя в выявленные очаги нужно выпустить энкарзию. Листья с черными (мумифицированными) личинками белокрылки, содержащими энкарзию, в необходимом количестве следует разложить на средние листья заселенного вредителем растения.
Учеты численности белокрылки нужно проводить минимум один раз в неделю. При увеличении численности вредителя выпуски паразита повторяют через 10—12 дней. Для успешной биологической защиты необходимо, чтобы 25% личинок белокрылки были заражены энкарзией в течение первого месяца после ее выпуска, 50% — через 2 месяца и 80% — через 3 месяца. Самки энкарзии откладывают яйца, притом только по одному, в тело личинок белокрылки второго, третьего и частично четвертого возрастов. Зараженные энкарзией личинки белокрылки через определенное время погибают, мумифицируются и приобретают характерный черный цвет.
Как и белокрылка, энкарзия дает несколько поколений в год. При температуре 20°С и относительной влажности воздуха 70—90% продолжительность развития одного поколения энкарзии составляет 20—25 дней, а продолжительность жизни имаго — 25—28 дней. Период яйцекладки продолжается 19—21 день, одна самка при этих условиях может отложить 60—65 яиц. Эффективность паразита энкарзии в борьбе с белокрылкой достигается во всех случаях при своевременном выявлении очагов вредителя и выпуске соответствующей нормы паразита (табл. 11.4). Норму колонизации определяют, исходя из соотношения паразита и хищника 1 : 5 (по имаго) для огурца, 1 : 10 — для томата, или 5—10 особей на 1 м2 теплицы. Выпуски повторяют через 10—15 дней, в зависимости от численности вредителя. Выпускают паразита, раскладывая листья с предварительно отсчитанными в нужном количестве мумифицированными нимфами белокрылки.
Для борьбы с тепличной белокрылкой применяют также микробиологические препараты, изготовленные на основе спор грибов рода ашерсония и вертициллиума.
Ашерсония (Aschersonia) заражает личинки белокрылки 2-го и 3-го возрастов и не активна против имаго. Споры гриба, прорастая, проникают в тело личинки. Признаки заболевания проявляются на 6—7 день, когда на теле личинки появляется экссудат в виде капли. Позднее на мертвой личинке развивается плотная выпуклая пустула округлой формы, размером 2—4 мм в диаметре. Цвет пустулы по мере развития меняется и становится характерным для данной культуры гриба. Многочисленные споры — конидии, развивающиеся на поверхности пустул, разносятся каплями росы, насекомыми, вызывая заражение новых личинок вредителя. Вследствие своих биологических особенностей ашерсония, внесенная в популяции белокрылки даже в небольших количествах, постепенно накапливается.
Наибольшую гибель личинок белокрылки вызывают грибы, выращенные на пивном жидком и агаризованном субстрате. С целью удешевления сырья и отказа от дефицитного агар-агара, для применения в производственных условиях рекомендуется выращивать гриб на отходах ячменя, полученных от производства трихограммы.
Применяется ашерсония способом опрыскивания растений суспензией спор, полученной путем смыва их водой с готовой культуры. Для получения 1000 л готовой суспензии с оптимальной концентрацией (1 ■ 107 спор в 1 мл суспензии) нужно нужно смыть их с 80—100 бутылок. Полученной суспензией (1000 л) можно обрабатывать 0,5 га, т.е. на 1000 м2 расходуется 200 л суспензии. Опрыскивания необходимо повторять через каждые 10—12 дней. Эффективность применения ашерсонии зависит от концентрации, т.е. титра водной суспензии, качественно проведенного опрыскивания, а также температуры (не ниже 23—25°С) и относительной влажности воздуха (70—80%).
Из имеющихся 11 форм гриба ашерсонии наиболее эффективными оказались три формы: китайская, индийская и тринидадская и смесь этих трех форм. У всех трех форм получена высокая эффективность при опрыскивании растений суспензией, содержащей 8 - 106 и 2-107 спор в 1 мл, наибольшей эффективностью обладала смесь трех форм, что составило 94,5%.
Для более успешной борьбы с белокрылкой можно совмещать выпуски паразита энкарзии с обработками растений ашерсонией. При преобладании личинок белокрылки 1-го и 2-го возрастов необходимо растения обработать ашерсонией, а затем через 4—5 дней провести выпуск энкарзии из расчета 5 особей на одно растение. При преобладании личинок белокрылки 3-го и 4-го возрастов необходимо выпустить энкарзию, затем через 14—15 дней растения следует обработать ашерсонией. Обработки биопрепаратом с последующими выпусками повторять через каждые 10—12 дней.
Гриб вертициллиум, в отличие от ашерсонии, поражает белокрылку в фазу яйца, личинки и взрослого насекомого.
Вертициллиум может развиваться в широком диапазоне температур от 5 до 32°С. При температурах выше 32°С рост мицелия гриба прекращается. Оптимальными условиями для развития мицелия гриба является температура воздуха 22—26°С и относительная влажность воздуха 95—100%. Жизнеспособность гриба сохраняется в течение 15 дней при температуре 5°С.
Опрыскивание проводят в вечерние часы. В теплице, где применяли вертициллиум, температура должна быть не ниже 25°С и относительная влажность воздуха не ниже 95%.
Следует отметить, что вертициллиум в высокой степени вирулентен к паразиту белокрылки энкарзии, поэтому совместно их применять не желательно.
В практических целях в борьбе с белокрылкой по растительным остаткам можно проводить дезинфекцию теплиц сернистым газом (сжигание 100 г серы на 1 м3).
В борьбе с тлями предлагается большой выбор биологических средств, однако борьба сними все же остается наиболее проблематичной. Овощеводство, а также цветоводство несут огромные убытки из-за потери урожайности. Эффективность биозащиты недостаточна из-за узкой специализации биологических средств, т.е. против разных видов нужны разные афидофаги. На разных овощных культурах против одних и тех же тлей некоторые биосредства дают разные результаты.
Более 60 видов тлей уничтожают личинки хищной галлицы афидимизы (Aphidoletes aphidimyza Rond.).
Взрослые галлицы активнее в сумеречные и ночные часы и нуждаются в дополнительном питании. Кормом для них является медвяная роса, выделяемая тлями. Самка откладывает яйца на растении от 50 до 140 шт в колонии тлей, причем обладает высокой поисковой способностью, что имеет большое значение при применении афидофага в борьбе с тлями в производственных теплицах.
Хищничают только личинки. Личинка при оптимальных условиях температуры 25°С и относительной влажности воздуха 80—90% развивается 5—6 дней, куколки 10—12 дней, на развитие одного поколения требуется 17—20 дней. Эффективность применения зависит в основном от своевременного обнаружения очагов тли и выпуска хищника. При обнаружении единичных очагов вредителя (не более одного на каждые 100 м2 площади теплицы и отсутствии крылатых самок в колонии тлей) раскладывают по 50—70 коконов в среднем на 1 м2. Если очагов больше и обнаружены крылатые самки тли, норму выпуска галлицы увеличивают в 2—3 раза. При колонизации коконы размещают в нескольких местах теплицы, помещая их на увлажненную почву торфоперегнойных горшочков на высоте 30—50 см. Вместо коконов в очаг вредителя можно выпускать личинок в соотношении хищника и жертвы 1 : 2, взрослые особи энтомофага выпускаются из расчета 1 самка на 25—30 тлей.
При защите растений огурца положительных результатов можно достичь лишь при многократных выпусках энтомофага. На многих видах тлей (в частности бахчевой и персиковой) хищничают личинки златоглазки обыкновенной (Chrysopa carnea Steph.). Личинки удлиненно-веретеновидной формы с тремя парами грудных ног. Их тело светло-желтого или темно-серого цвета, обычно с рисунком из темных полос. В своем развитии личинки имеют три возраста. Закончившая развитие личинка окукливается в шелковистом коконе. Куколка свободная, открытая, зеленого цвета. Кокон довольно плотный, округлой формы белого или светло-серого цвета.
Отродившаяся личинка сразу же начинает питаться. Прожорливость личинок по мере развития увеличивается, наибольшая она у личинок третьего возраста. Поисковая способность личинки златоглазки определяется также характером поверхности листьев растений, на которых обитает златоглазка. На сортах с сильноопушенной поверхностью листьев растений огурца эффективность личинок златоглазки значительно ниже по сравнению с сортами, листья которых имеют гладкую поверхность, или на растениях некоторых зеленных культур. Обычно личинки хищника предпочитают слабо освещенные места. Прожорливость личинок очень высокая. Одна личинка за весь период развития уничтожает 500—600 тлей.
В настоящее время для борьбы с тлями в теплицах златоглазку размножают в массовом количестве в производственных биолабораториях по методике, разработанной ВНИИБ. При разведении златоглазки в качестве корма для личинок используют яйца зерновой моли, которые получают при три-хограммном производстве. К массовому размножению златоглазки приступают за 30—40 дней до ее применения против тлей в теплицах. Важным элементом технологии применения энтомофага служит систематическое обследование теплиц с целью выявления очагов вредителя. Выпускают златоглазку при численности вредителя 150—200 тлей на одно растение в соотно-
шении хищник-жертва 1:5. Энтомофага выпускают в фазу яйца или личинок второго возраста, стряхивая их с бумажных ячеистых вкладышей садка, где их выращивают. Если численность вредителя после выпуска златоглазки не снижается, проводят повторную колонизацию. В жаркие дни колонизацию лучше выполнять вечером, при пасмурной погоде — в любое время суток. Высокие дневные температуры отрицательно воздействуют на поведение личинок златоглазки, они мигрируют с растений и укрываются в пазухах листьев нижнего яруса. Надо отметить, что раскладка яиц в осенне-зимний период неэффективна, так как резкие колебания температуры воздуха приводят к задержке развития и гибели значительной части эмбрионов хищника.
При защите растений огурца от тлей положительных результатов можно добиться лишь при многократных выпусках златоглазки. Для защиты зеленных культур энтомофага применяют в фазу личинки второго возраста, в соотношении хищник-жертва 1 : 10, 1 : 15, 1 : 30, в зависимости от численности тлей. Кратности выпуска зависят от периода вегетации растений.
Большое значение в снижении численности персиковой тли имеет паразитическое насекомое афидиус (Aphidius africariae Hal.) из семейства афиди-ид. Применяют паразита в основном на сладком перце.
Продолжительность жизни имаго и плодовитость зависят от климатических условий. Оптимальными условиями для паразита являются температура 25°С и относительная влажность воздуха 70—80% В этом случае, в присутствии персиковой тли, достигается максимальная плодовитость свыше 300 яиц, а продолжительность жизни составляет до 14 суток. При разведении афидиуса кормом служит не естественный хозяин — персиковая тля, а обыкновенная злаковая. Преимущество злаковой тли перед другими видами в том, что она не повреждает огурец, томат, зеленные и др. культуры, возделываемые в защищенном грунте. Весь цикл размножения паразита от посева растений до сбора мумий завершается за 16—18 суток.
Выпускают паразита в очаги тлей в мумиях с растениями, на которых они развивались. Мумии раскладывают на верхние листья защищаемых растений. Соотношение при выпуске должно составлять не менее одной самки паразита на 20—30 тлей. Выпускать афидиуса необходимо в течение 3—4 недель с еженедельным интервалом. При своевременном правильном применении паразита популяция вредителя может быть уничтожена полностью в течение 20—30 дней, при отсутствии тлей афидиус погибает.
Против бахчевой тли успешно применяются интродуцированные энтомофага — Lusiphlebus testaceipes Chiss и L. fabarum Marsck. С целью накопления лизифлебуса для массового выпуска в теплицы он хорошо сохраняется в холодильнике при температуре +5°С в течение 20 суток. При трехкратном применении энтомофага в теплице в соотношении паразит-хозяин 1 : 20 биологическая эффективность составила 76%, при норме выпуска 1:10 — свыше 83%.
Положительные результаты получены при применении хищного клопа макролофуса (Macrolophus nubilis H. S.) из семейства клопов-слепняков, который способен эффективно уничтожать тлю, белокрылку, трипе зв и других вредителей. Макролофус является зоофитофагом. При наличии трипсов, тли и белокрылки одновременно в одной теплице клоп в первую очередь уничто-
жает белокрылку, затем тлю, трипсов. Если названные вредители отсутствуют, хищник может питаться также паутинными клещами. Эта особенность хищника позволяет направлено использовать его в различных системах защиты растений. Например, при наличии в теплице белокрылки, тли и паутинного клеща, его выпуски можно совмещать с выпусками фитосейулюса.
Макролофус может развиваться более чем на 30-ти видах растений, наиболее подходящим является табак. Благоприятной является температура 25—27°С и относительная влажность воздуха 75—85%. Продолжительность эмбрионального развития составляет в среднем 20—22 дня, продолжительность жизни самок — 20—31 день, потенциальная плодовитость 140 яиц.
Суммарная продолжительность жизни и хищничество личинок и имаго клопа достигает 50—60 дней.
Хищничают все стадии развития личинок и взрослые особи клопа. Отмечено, что имаго сутки уничтожает столько белокрылки, сколько личинка клопа младших возрастов. За время развития одной генерации один клоп уничтожает 3225 яиц или 2390 личинок белокрылки. Естественный корм можно заменять яйцами зерновой моли (ситотроги). Сбор клопа и личинок с растений осуществляется с помощью эксгаустера или садка-ловушки. Пестициды токсичны для всех стадий развития энтомофага. Колонизацию в теплицы можно осуществлять до появления белокрылки и в очаги вредителей. Выпуск клопа целесообразно проводить из расчета 5 особей на 1 м2 площади, или 10—15 личинок на каждое растение-резервант.
Известно более 40 видов насекомых и клещей, которые являются хищниками или паразитами табачного трипса. К наиболее перспективным из них относится хищный клещ — амблисейус маккензи (Ambliseiys mckezie Sch. Et Pr.), которого используют в основном в защищенном грунте. Разводят клеща по методике, разработанной ВНИИФ.
Хищный образ жизни у амблисейуса ведут протонимфы, дейтонимфы и взрослые клещи. Самка хищника ежесуточно уничтожает более 7 личинок табачного трипса, иногда питается яйцами, выступающими на поверхность. Взрослыми особями вредителя амблисейус не питается.
Выпускают амблисейуса в количестве 2—5 самок на один лист или 2 самки на 100 см2 листовой поверхности, также при соотношении хищник-жертва 1 : 1 или 1 : 2 выпускают хищника на каждое растение, на котором обнаружен трипе. Плодовитость самок при температуре 25°С составляет 2,7 яйца в сутки. На развитие хищника отрицательно влияет снижение температуры. Численность уменьшается, что сказывается на его эффективности.
В борьбе с табачным трипсом используют микробиопрепарат мускардин-ных грибов (Beauveria bassiana Bals.). Технический препарат выпускается в виде порошка серого или кремового цвета с титром не менее 2 млрд спор на 1 г.
Растения, заселенные трипсом, обрабатывают двукратно 0,1%-ой суспензией боверина с титром 6 млрд спор в 1 г сухого порошка с интервалом 7 дней. При применении боверина необходимо учитывать, что эффективность его зависит не только от качества препарата, но и от относительной влажности температуры воздуха в теплице, где проводилась обработка. Для развития гриба необходима температура 20—25 °С и относительная влажность 80—95%,
Лук, зараженный трипсом, перед высадкой необходимо обработать тер-
мическим способом сухим или влажным. Сухое прогревание лука проводят при температуре 42—43°С в течение 2 суток, влажное при температуре 5°С — в течение 5 минут с последующим охлаждением холодной водой.
Важнейшее регулирующее значение в динамике численности пасленовой мухи (Liriomiza solani Macg.) имеют паразиты Opius pallipes (Himenoptera, Braconidae), Digliphus isaca, Chrysocharis sp. (Himenoptera, Europhidae) и Dacnusa sibirica (Himenoptera, Braconidae).
Для развития энтомофага благоприятна температура в пределах 25°С, влажность воздуха 60%. В этих условиях развитие генерации заканчивается за 14 дней, плодовитость составляет 68 яиц. Биологическая активность энтомофага реализуется при соотношении паразит-хозяин 1 : 30 и составляет 76—80%. Технология разведения разработана и находит широкое применение в теплицах.
Одним из эффективных паразитов минирующих мух считается внутренний паразит Dacnuca sibirica Telenga. Дакнуза заражает все возрасты личинок вредителя. Развитие личинки куколки дакнузы проходит в пупарии минера. Зимует в фазе куколки.
Весь цикл развития при оптимальной температуре проходит за 16 суток. Взрослые особи живут в среднем 7,6 суток. Плодовитость дакнузы в среднем составляет 93,6 яйца на одну самку. Биологическая эффективность применения дакнузы в соотношении 1 самка паразита на 15 личинок равняется 61—72%.
Среди многочисленных эктопаразитов минирующих мух большое практическое значение имеет Digliphus isacaea Walker. Это мелкое насекомое (1,2—2,8 мм) черного блестящего цвета, с узкими равномерно опущенными от основания до вершины крыльями.
Личинки диглифуса, отродившиеся от яиц, передвигаются к жертве (личинка минера) и приступают к питанию. Завершив питание, личинки расползаются и окукливаются прямо в мине. Отродившееся из куколки взрослое насекомое прогрызет эпидермис листа (мины) и выходит на поверхность. Весь предимагинальный период развития диглифус проходит в минере и составляет 16,6 суток. Взрослые особи диглифуса живут 2—3 месяца.
В теплице диглифуса выпускают в очаги размножения минера многократно, с интервалом 7—10 дней в соотношении паразит-жертва 1 : 10. Эта мера обеспечивает снижение численности минера до конца вегетации растения.
Ассортимент биологических препаратов в борьбе с болезнями огурца и томата весьма незначителен.
Против бактериоза томата применяется биологический бактерицид и фунгицид Фитолавин-300. Это порошок желто-серого цвета на основании антибиотика фитобактериомицина. Высокоэффективен против корневых слизистых и сосудистых бактериозов, фузариозов, а также листовых бактериозов. Обладает местным системным действием, не фитотоксичен, не токсичен для энтомофагов и насекомых опылителей. Применяется для предпосевного замачивания семян в 0,2% рабочем растворе на 2 часа и для обработки рассады, начиная с фазы 1—3 настоящих листьев, 0,2% рабочим раствором с интервалом 15 дней.
Биопрепарат, изготовленный на основе почвенного гриба — антагониста Trichoderma lignorum Harz., широко используется в теплицах против корне-
вых гнилей, стеблевой и серой гнили, аскохитоза. В борьбе с корневыми гнилями препарат вносят в почву или субстраты из минеральной ваты путем внесения споровой массы биопрепарата в 0,15—0,2% концентрации, обработки вегетирующих растений проводят при начальном появлении заболевания. Биологические средства защиты растений нуждаются в контроле за их качеством. Энтомофаги должны быть жизнеспособными, о чем в определенной мере можно судить по внешнему виду и весу объектов. Приобретая эн-томо-акарифагов, надо уметь оценивать не только их качество, но и количество в упаковке. Приведем некоторые рекомендации, облегчающие такую оценку:
в 1 г очищенной энкарзии содержится 30 тысяч мумий с паразитами;
1 тысяча коконов галлицы имеет массу приблизительно 4 г;
в 1 г мумий лизифлебуса или афидиуса содержится 4 тысячи особей.
Сложнее учитывать хищных клещей. Как правило, в этом случае приходится доверять производителю. В стандартной трехлитровой банке с листьями сои может быть от нескольких до 30 тыс. особей хищника; в 1 мл отрубей по стандарту должно быть 50—60 особей амблисейуса, но может их там находиться и 250 тысяч.
Однако содержание определенного количества хищника или паразита в упаковке не гарантирует хорошего качества. Так, например, если коконы галлицы пролежали в холодильнике больше недели, то их жизнеспособность заметно уменьшается. Можно видеть, как отродившиеся имаго погибают рядом с коконами.
Другой пример касается фитосейулюса. В упаковке (в банке или пакете) с ним допускается содержание некоторого количества паутинного клеща. Ранее разработанный стандарт допускал соотношение хищника и жертвы 1 : 1. Но такое соотношение не всегда выдерживается и не всегда необходимо. Например, при профилактических выпусках фитосейулюса и паутинных клещей оно может быть 1 : 20.
Приобретая биологические средства, следует учитывать также дальность транспортировки, температурный режим в пути и вид тары. Незначительные отклонения от рекомендованных режимов ведут к заметному изменению количества доставляемого биоматериала.
