- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
Промотор – специальная регуляторная последовательность ДНК, необходимая для правильного взаимодействия с РНК-полимеразой и точного начала транскрипции. В промоторах эукариот были выделены три структурныхучастка, в которых обнаруживается значимая гомология. Этими участками являются:
стартовая точка;
участок, расположенный в районе – 25 против хода транскрипции;
и участок в районе положения – 75 против хода транскрипции.
В зависимости от типа используемой РНК-полимеразы различают промоторы генов класса I, класса II и класса III.
-Класс I:Промоторы генов класса I включают левый регуляторный элемент, расположенный на расстоянии 100 п.н. от стартовой точки генов пре-рРНК. Два фактора транскрипции – UBF и SL1 связываются с регуляторным элементом промотора и стабилизируют инициирующий комплекс.
-Класс II:Гены класса II транскрибируются с помощью РНК-полимеразы II. Регуляторные последовательности промоторов генов этого класса включают:
ТАТА-бокс (блок Хогнесса); СААТ-бокс; ГЦ-бокс; цис-элементы; Энхансеры; Сайленсеры.
-Класс III :Внутренние элементы промотора (А-бокс и В-бокс) находятся во всех генах тРНК. Два транскрипционных фактора необходимы для инициации транскрипции всех генов тРНК: TFIIIC и TFIIIB.
Промоторы разных генов эукариот довольно разнообразны по нуклеотидному составу. Однако, почти для всех промоторов генов эукариот класса II характерно наличие консервативной последовательности из 7 оснований на расстоянии 19-27 нуклеотидов слева от точки инициации транскрипции. Это так называемый блок Хогнесса, который обеспечивает корректное расположение РНК-полимеразы по отношению к стартовой точке. Распологается предпочтительно в положении -25. Данная каноническая последовательность состоит в основном из пар А-Т и окружена последовательностями, богатыми G-C.
Далее против хода транскрипции имеется другая консервативная последовательность, расположенная между положениями -70 и -80. Иногда эта последовательность обозначается как СААТ-блок.-70 блок вызывает снижение частоты инициации в обычной стартовой точке приблизительно до 2% от первоначального уровня.
40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
РНК-полимераза –это белковый комплекс, который называется полный фермент, или холофермент. Состоит из двух α, одной β, β’,ω-субъединиц и фактором σ. Холофермент можно разделить биохимическими методами на минимальный фермент (кор-фермент)(2αβ,β’ω) и σ-фактор. Только полный фермент может инициировать транскрипцию, далее σ-фермент высвобождается и собственно элонгация осуществляется с участием кор-фермента.
Основная функция σ-фактора – обеспечить узнавание и стабильное связывание РНК-полимеразы с промоторами, а не со случайными участками ДНК. Снижение сродства РНК по отношению к участкам ДНК не имеющих промоторов в 104 раз, что также способствует специфической инициации транскрипции. Участвует в раскрывании двойной спирали ДНК.
Взаимодействие холофермента с промотором начинается с образования двойного закрытого комплекса, который затем переходит в двойной открытый комплекс. При этом происходит плавление небольшого участка ДНК, что приводит к образованию прочного связывания. После образования двойного открытого комплекса происходит включение двух первых нуклеотидов с образованием фосфодиэфирной связи между ними. В результате формируется тройной комплекс, включающий минимальный фермент, ДНК и синтезирующуюся РНК. На этой стадии σ-фактор отделяется от РНК-полимеразы. Когда транскрипция заканчивается, минимальный фермент отделяется от ДНК в виде свободного белкового тетрамера. Свободный кор-фермент затем должен найти другой σ-фактор и включиться в следующий цикл транскрипции.
