- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
Хроматиновые волокна(10 нм) в 2 альтернативных формах: А) в форме сплошного волокна; Б) (чаще) в форме вытянутого волокна с утолщениями – «бусинками», нанизанными по всей длине нити с определенными интервалами. утолщения нуклеопротеидные комплексы, связанные с cильнооснóвными белками– гистонами. Каждая из «бусинок» - организованная структура - нуклеосомы. Индивидуальные нуклеосомы соединены свободной двухцепочечной ДНК. Нуклеопротеидный комплекс:
-«Нуклеосомный кор»
-Хроматосома (базовый структ. элемент нуклеопрот. комплекса, сост. из 166 пар нуклеотидов суперспирализ. ДНК, обернутой дважды вокруг гистонового октамера. Фиксируется Н1)
Структура, отличающаяся неизменностью строения в организации хроматина - минимальная нуклеосома(=нуклеосомный кор). состоит из сегмента хромосомной ДНК длиной 146 пар оснований намотанной на гистоновый октамер, включающий гистоны Н2А, Н2В, Н3 и Н4 – по две молекулы каждого белка. минимальные нуклеосомы имеют дискообразную форму и представлены отрицательно суперспирализованной ДНК накрученной на октамер гистонового кора. Этот октамер состоит из центрального тетрамера построенного из двух прочно взаимодействующих гетеродимеров Н3:Н4. С каждой стороны тетрамера располагаются гетеродимеры Н2А:Н2В. Полинуклеосома – сост. из нуклеосом, связ. линкерной ДНК (166 пар оснований). Модель нуклеосомного кора: Сегмент ДНК длиной 146 пар оснований обвивает гистоновый октамер, делая вокруг него 1¾ оборота.
Гистоны:
богатые лизином (Н1),
умеренно богатые лизином (Н2А и Н2В)
богатые аргинином (Н3 и Н4).
Каждый гистон кора имеет компактный домен(70-100 АК-остатков) и гибкий (подвижный) N-концевой «хвост» (30 АК-остатков). Оснóвные N-концевые области белков ответственны за связывание с ДНК.
Нуклеоплазмин - белок сборки, контролирует реакцию ДНК с гистонами, ведет к образованию нуклеосом. «молекулярный сопровождающий».
В результате взаимодействия с нуклеосомными частицами происходит формирование волокна диаметром 10 нм (100Å) - нуклеофиламент. при повышении ионной силы спиральный соленоид d= 30 нм (300Å). Данный этап конденсации ДНК характеризуется плотностью упаковки со значением 40-50. спирализованный соленоид укладывается в спираль высшего порядка, впоследствии формирует «шпилькообразную» структуру диаметром 60 нм.
12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
Гистоны- ядерные белки, необходимые для сборки и упаковки нитей ДНК в хромосоме.
По относительной доле основных АК ( Lys/Arg) существует 5 типов гистонов, имеющих разные размеры полипептидных цепей.
Гистоны, как основные белки, часто классифицируют:
1)богатые лизином (Н1)
2)умеренно богатые лизином (Н2А и Н2В)
3)богатые аргинином (Н3 и Н4)
Каждый гистон имеет компактный домен из 70-100 АК-ных остатков и гибкий N-концевой хвост, содержащий около 30 АК-ных остатков. Домены гистонов построены из Z-образных гистоновых складок, состоящих из одного длинного α-спирализованного участка и двух примыкающих к нему коротких α-спиралей. Анализ АК-ных последовательностей гистонов Н4, выделенных из проростков гороха и из тимуса теленка показал, что они различаются по двум положениям из 102 (Val вместо Ile и Lys вместо Arg). Т.о последовательность АК в Н4 сохранилась почти без изменений →эволюционная стабильность.
Гистон Н3 также мало изменился в ходе эволюции. Последовательность АК из проростков гороха и из тимуса различается по четырем положениям.
Для сравнения скорости изменения последовательности этих гистонов в ходе эволюции со скоростью изменения других белков используют величину единичного эволюционного периода, она равна времени, за которое последовательность АК в белке изменилась на 1%.
Н2А и Н2В менее консервативные, но все еще проявляют эволюционную стабильность, особенно в пределах неосновных последовательностей АК.
Н1 отличается от других гистонов тем, что они крупнее, более основные и характеризуются высокой видовой и тканевой специфичностью. В следствии высокого содержания в них Lys и Arg они обладают выраженными поликатионными свойствами и легко взаимодействуют с полианионным остовом ДНК, образуя незаряженные нуклеопротеидные комплексы.
N-концевые последовательности - высококонсервативные области, т.к они выполняют 2 основные функции: 1) дают возможность нуклеосомам упаковываться в волокно d=30нм., 2) специфические модификации этих концов используются для сборки хроматина и для регуляции доступности ДНК в составе хроматиновых волокон аппаратам транскрипции, репликации и репарации.
