- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
Механизм удаления интронов в тРНК лучше всего изучен у дрожжей, но некоторая информация получена в опытах с другими низшими эукариотами и растениями.
В основе сплайсинга лежит узнавание вторичной структуры определенного типа, а не определенной нуклеотидной последовательности.
Специфическая тРНК-эндонуклеаза расщепляет про-тРНК в 5'-сочленении интрона с образованием циклического 2',3'-фосфодиэфира на конце 5'-половины тРНК. Тот же фермент расщепляет другое сочленение интрона с образованием 5'-гидроксильной группы на конце 3’-половины тРНК. Эти реакции напоминают расщепление под действием некоторых РНКаз. Циклический фосфодиэфир на конце 5'-экзона затем отщепляется с образованием 2'-фос-фомоноэфира под действием циклической фосфо-диэстеразы. После фосфорилирования 5'-гидроксильного конца 3’-экзон аденилируется при помощи тРНК- лигазы. После лигирования активированных концов двух частей молекулы образуется необычная 2'-фосфат-3',5'-фосфодиэфирная связь, и затем при отщеплении 2'-фосфата под действием фосфатазы получается зрелая молекула тРНК. Заметим, что фосфат, участвующий в образовании новой диэфир-ной связи, до этого входил в состав АТР-особенность, отличающая сплайсинг тРНК у дрожжей от аналогичного процесса у позвоночных В данной цепи реакций первоначальное эндонуклеозное расщепление приводит к образованию 5'-гид-роксильного и 3’-фосфомоноэфирного концов, причем последний превращается в циклический 2',3'-фосфодиэфир под действием АТР-зависимой циклазы. Затем тРНК- лигаза соединяет обе части без дополнительной активации концов. На первой стадии реакции сшивания происходит активация РНК-лигазы с участием АТФ с образованием аденилированного белка, при этом фосфатная группа АМФ ковалентно взаимодействует с адной из аминогрупп фермента.
При фракционировании системы сплайсинга дрожжей получены высокоочищенные препараты двух ферментов. Один из них катализирует эндо-нуклеазное расщепление на границах интрона; второй проявляет активность циклической фосфодиэс-теразы и киназы и способен катализировать аденилирование и лигирование, причем все эти активности принадлежат одной полипептидной цепи. Оба фермента проявляют высокую специфичность в отношении данных реакций сплайсинга тРНК, однако они неспецифически действуют на любые тРНК-ин-троны и соединяют два участка любых тРНК. И действительно, из частей молекул, принадлежащих разным тРНК, были сконструированы весьма интересные гибриды.торая до этого была концевым фосфатом АТР. У позвоночных три указанные реакции катализируют отдельные ферменты, при этом каждый фермент участвует только в сплайсинге тРНК.
.
46. Процессинг транскриптов РНК-полимеразы I. Наружные (НТС) и внутренние (ВТС) транскрибируемые спейсеры. Специфические малые ядрышковые РНК C/D и Н/АСА в реакциях 2′-О-метилирования и псевдоуридилирования рРНК.
В ядрышках протекают процессы синтеза и первичной сборки рибосомных частиц.Ранние электронномикроскопические исследования ядрышек диспергированных в растворах с низкой ионной силой позволили обнаружить целые серии структур внешне похожих на рождественскую елку. Сейчас известно, что каждая такая «рождественская елка» представляет собой одну повторяющуюся единицу рДНК (т.е. один ген рибосомной РНК из примерно 100-200 тандемно повторяющихся генов) транскрибируемую РНК-полимеразой I. Рибосомная ДНК образует ствол «дерева», синтезирующаяся пре-рРНК формирует «ветви», а комплексы процессинга, содержащие U3 snoРНК, которые быстро связываются с новосинтезированной рРНК вдали от 5/-сайта процессинга, формируют 5/-терминальные «шарики», которые выглядят как орнамент.
Из молекул-предшественников выщепляются 18S-, 5.8S- и 28S-рРНК, используются для образования малых и больших субчастиц рибосом. В ходе эндонуклеолитических и экзонуклеолитических реакций процессинга раличающиеся по размеру наружные(НТС) и внутренние(ВТС) транскрибируемые спейсеры удаляются и впоследствии разрушаются. Реакции расщепления протекают как в пределах самих транскрибируемых спейсеров, так и по их концам. Реакции расщепления по разным сайтам процессинга фундаментально различаются. Процессинг молекул пре-рРНК заключается не только в реакциях разрезания, но и в реакциях модификации, которым подвергаются приблизительно 200 специфических нуклеотидных остатков в составе первичного транскрипта, около 80 рибосомальных белков быстро связывается в ядрышках с пре-рРНК и несколько белков дополнительно связывается в цитоплазме с областью пре-рРНК, соответствующей 18S-фрагменту.
U3 snoРНП-комплекс важен для самой ранней стадии разрезания пре-рРНК –первое событие в процессинге пре-рРНК млекопитающих – в сайте, расположенном в пределах наружного транскрибируемого спейсера (ETS) на 5/-конце транскрипта.U3 snoРНП-комплекс также обеспечивает разрезание во внутреннем транскрибируемом спейсере 1 (ITS1) и у дрожжей в высвобождении зрелой 18S-рРНК принимают участие U22 и U14 РНК. Молекула U14 РНК также играет роль шаперона, обеспечивая фолдинг внутренней области участка, соответствующего 18S-рРНК млекопитающих. Молекула U8 РНК участвует в разрезании транскрипта в пределах участка ITS1 и обеспечивает разрезание внешнего транскрибируемого спейсера (ETS) на 3/-конце транскрипта. MRP расщепляет эукариотическую пре-рРНК по сайту, похожему на сайт на который действует РНКаза Р при выщеплении тРНК из прокариотической пре-рРНК. После этих специфических эндонуклеолитических разрезаний, образующиеся фрагменты подравниваются с участием 5/→3/- и 3/→5/-экзонуклеаз.
snoРНП-комплексы выполняют функцию проводников по молекулам рРНК, направляя реакции 2/-О-метилирования по приблизительно 110 сайтам и реакции псевдоуридилирования по 95 сайтам у млекопитающих. Спаривание происходит в тех участках, которые подвергаются модификации. Молекулы snoРНК, направлящие 2/-О-метилирование отличаются наличием последовательностей, называемых блоками С и D, которые связывают 2/-О-метилазу. Те snoРНК, которые направляют псевдоуридилирование, содержат блоки Н и АСА и связывают псевдоуридин-синтазу. Реакции метилирования и псевдоуридилирования, ограниченные наиболее высоко консервативными последовательностями в рРНК, протекают сразу после транскрипции и вероятно согласованы с фолдингом рРНК. Процессинг пре-рРНК транскриптов зависит от участия многочисленных малых РНК, принимающих участие в модификации, разрезании и фолдинге 18S-, 5.8S- и 28S-рРНК, которые в сборке с белками экспортируются в цитоплазму для участия в процессе трансляции в качестве малых и больших субчастиц рибосом.
