- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
Элонгация-совокупность реакций, обеспечивающих образование пептидных связей. Это наиболее быстрая стадия белкового синтеза, где рибосома перемещается от первого до последнего кодона на кодирующей части иРНК.
Цикл элонгации включает три этапа: связывание аминоацил-тРНК в А-центре рибосомы, образование пептидной связи и транслокация. Для образования первой пептидной связи инициирующая тРНК, исходно попадающая в Р-центр, выполняет функцию пептидил-тРНК. Доставка аминоацил-тРНК в А-центр происходит при участии фактора элонгации (EF). Имеются 2 фактора(E.coli):EF-Tu и EF-Ts. EF-Tu представляет собой единственную полипептидную цепь. АК-ная последовательность EF-Tu кодируется генами – tufA и tufB. EF-Tu связывает аминоацил-тРНК и GTP. Содержание EF-Ts существенно ниже и соответствует числу рибосом. Он связывает EF-Tu, вытесняя GDP. АК-ная последовательность кодируется геном tsf . Гидролиз GTP необходим для превращения [EF-Tu. GTP] в [EF-TuGDP], отделяющийся от рибосомы, которая при этом приобретает конформацию, необходимую для образования пептидной связи.
Уэукариот факторы элонгации – eEF-1 и eEF-2. Роль eEF-1 - доставлять аминоацил-тРНК в рибосому. В eEF-1 входит несколько полипептидных цепей.
Синтезируемая полипептидная цепь удлиняется за счет переноса полипептида, связанного с тРНК в Р-центре рибосомы на аминоацил-тРНК, доставленную фактором EF-Tu в А-центр. Синтез пептидной связи катализируется пептидилтрансферазой, субстратом которой служит аминоацил-3/-тРНК.
После образования пептидной связи в Р-центре находится тРНК со свободным 3/-концом, а А-центр занимает пептидил-тРНК. При транслокации тРНК со свободным 3/- концом выталкивается из рибосомы, а пептидил-тРНК оказывается в Р-центре. В результате в рибосоме освобождается А-центр, готовый принять следующую аминоацил-тРНК для возобновления цикла элонгации.
Транслокация-последовательность реакций, где с рибосомой взаимодействует фактор EF-G(в присутствие GTP).
Рибосома не способна связывать факторы EF-Tu и EF-G одновременно. Фактор EF-G может связаться только после того, как комплекс [EF-Tu. GDP] покинул рибосому. В свою очередь EF-G должен уступить место тройному комплексу [aa-тРНК . EF-Tu. GTP].
У эукариот аналогом EF-G является белок eEF-2, функционирующий, по-видимому, сходным образом, как транслоказа, зависящая от гидролиза GTP. Фактор eEF-2 является крупным белком. Уникальным свойством фактора eEF-2 является его чувствительность к дифтерийному токсину.
57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
Окончание синтеза полипептидной цепи происходит при узнавании белковым фактором терминирующего кодона. Существует 3 терминирующих кодона: UAG-амбр-кодон, UAA – охра-кодон и UGA – опал-кодон.
У E.coli сущ. два белка, участвующих в терминации – факторы высвобождения (факторы терминации) – RF.
RF-1 узнает кодоны UAA и UAG, а RF-2 - UAA и UGA. Если стоп-кодоном является UAA, то эффективность процесса терминации оказывается наибольшей, поскольку поскольку этот триплет узнают два фактора - RF-1 и RF-2.
Для осуществления терминации необходимо, чтобы Р-центр был занят полипептидил-тРНК, а А-центр оставался свободным.
RF-факторы взаимодействуют с А-центром рибосомы, узнавая при этом стоп-кодоны.
Фактор RF-3 стимулирует активность RF-1 и RF-2 GTP-зависимым и кодон-независимым способами.
Реакция терминации включает в себя отделение полипептида от последней тРНК, вытеснение этой тРНК из рибосомы и отделение рибосомы от иРНК. Факторы освобождения зменяют специфичность пептидилтрансферазы таким образом, что акцептором активированного полипептидильного фрагмента становится не аминокислота, а вода. В результате полипептидная цепь покидает рибосому.
