- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
Корана разработал метод синтеза периодических сополимеров c определенной повторяющейся последовательностью (например, GUGUGU…., AAGAAG…… или GUUGUU……). Синтезировал ряд сополимеров с известной повторяющейся последовательностью из 2, 3 и даже 4 нуклеотидов. Эти регулярные сополимеры были использованы в качестве матриц в бесклеточной системе синтеза белка.в качестве матриц полирибонуклеотиды: poly(GAU), poly(GUAA) и poly(AUAG).
Матрица poly(GUAA):
Матрица, состоящая из повторяющейся последовательности трех оснований, poly(GAU). В зависимости от начала рамки считывания, должен образовываться полипептид, в состав которого будет входить аминокислота только одного вида.при трансляции такой матрицы, могут синтезироваться три различных гомополипептида. на poly(UUC) синтезировались полифенилаланин, полисерин и полилейцин. В случае poly(GAU) синтезировались не три гомополипептида, а два – полиметионин и полиаспарагиновая кислота. Причиной отсутствия синтеза третьего гомополипептида является то, что третья рамка считывания соответствует– UGA:
три кодона – UAG, UGA и UAA не кодируют аминокислоты, а являются сигналами остановки белкового синтеза. Сопоставление структуры белка дикого типа и участка белка между двумя мутациями типа «сдвиг рамки» выявило четкую корреляцию между измененным смыслом кодонов и последовательностью аминокислот в поврежденном участке белка.
Синтез полинуклеотидов с определенной последовательностью и использование их в качестве матриц для синтеза белка в сочетании с работами по связыванию тРНК с рибосомами в присутствии тринуклеотидов привели к полной расшифровке генетического кода в 1966 г.
51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
т
РНК
выполняет функцию адапторной молекулы,
ответственной за перевод последовательности
нуклеотидных триплетов в последовательность
АК. Последовательность любой тРНК может
быть изображена в форме клеверного
листа, образуемого в результате спаривания
оснований между короткими комплементарными
участками.4
основных структурных элемента:
Акцепторная
ветвь состоит
из двухцепочечного стебля, который
заканчивается CCA.
Остальные
ветви состоят из двухцепочечных стеблей,
на конце которых TC
петля: TC
- риботимидин
– псевдоуридин – цитидин. Антикодоновая
ветвь содержит
антикодоновый триплет в центре петли.
D-петля:
дигидроурацил.
тРНК
стандартная структура 76 оснований (74 -
95 оснований). Вариации в размере D-петли
могут достигать 4 оснований.дополнительная
петля,
расположенная между антикодоновой и
TC-петлями.тРНК
класса 1
имеют небольшую дополнительную петлю,
состоящую только из 3-5 оснований.
тРНК класса 2
относятся тРНК, имеющие большие
дополнительные петли (13 до 21) и
двухцепочечный стебель размером около
5 пар оснований.
Комплементарные О.,поддерживающие структуру клеверного листа тРНК консервативны.в акцепторной ветви насчитывается 7 комплементарных пар оснований, 5 – в TC-ветви, 5 – в антикодоновой ветви и обычно 3 в D-ветви. A-U и G-C, но встречаются также пары G-U, G- или А-. основания, находящиеся в некоторых положениях, являются консервативными или инвариантными.полуконсервативные или полуинвариантные, только один тип оснований – пуриновое или пиримидиновое.
Общие свойства тРНК:
одна полинуклеотидная цепь длиной от 74 до 95 рибонуклеотидов
наличие большого числа необычных оснований, от 7 до 15 на молекулу.
3. На 3/-конце всех тРНК расположена последовательность CCA.
4. половина нуклеотидов тРНК спарена и образует участки двойной спирали.
5. Антикодоновая петля состоит из семи оснований, расположенных, начиная с 5/-конца, в последовательности:
Форма клеверного листа, отражает вторичную структуру тРНК.
L-образная пространственная структура тРНК. Это третичная структура тРНК, свойственная, скорее всего для всех тРНК. Двухцепочечные участки вторичной структуры сохраняются и в третичной структуре, при этом в молекуле тРНК формируются две двойные спирали. В образовании одной двойной спирали принимают участие акцепторная и ТС ветви. Антикодоновая и D-ветвь формируют другую двойную спираль. Область изгиба между двойными спиралями содержит ТС- и D-петли. 2. молекула тРНК имеет L-образную форму. 3. вторичные водородные связи – водородные связи, поддерживающие структуру клеверного листа, третичные водородные связи (между основаниями,составляющими D- и ТС-петли) – дополнительные связи,обуславливающие формирование третичной структуры. Стабилизирующую роль играют нетрадиционные взаимодействия между основаниями и сахарофосфатным остовом, а также между основаниями и отдельными частями остатков рибозы, особенно с 2`-ОН группами. стэкинг-взаимодействия между остатками А, G и С. Играют важную роль в формировании внутри- и межмолекулярных взаимодействий, явл. результатом реализации ван-дер-вальсовых сил, возникающих за счет перекрывания π-облаков над и под двойными связями ненасыщ. колец пуринов и пиримидинов, содной стороны, и гидрофобных взаимодействий, с др. стороны. 4. отдельные участки тРНК максимально разобщены. ССА расположен на одном конце L-образной структуры, а другой конец представляет собой антикодоновую петлю. Последовательность ТС лежит в углу L-образной структуры.Минорные пиримидиновые основания — 5-метилцитозин, 5-оксиметилцитозин и др., минорные пуриновые основания — 2-метиладенин, 1-метилгуанин и др. Содержание М.О. в тРНК (до 10% от общего содержания азотистых оснований).
