- •1.Самореплицирующиеся молекулы. Естественный отбор самореплицирующихся молекул. Значение возникновения мембранных структур в эволюции клетки.
- •2.Нуклеиновые кислоты. Строение азотистых оснований. Пуриновые и пиримидиновые основания. Строение нуклеозидов и нуклеотидов
- •3.Доказательства генетической роли нуклеиновых кислот. Явление трансформации у бактерий. Эксперименты Эйвери, Мак-Леонда и Мак-Карти.
- •4. Модель днк Уотсона и Крика
- •5. Вращение связей между атомами, формирующими сахарофосфатный остов днк и свободное вращение с-1/-n-гликозидной связи – основа структурных вариаций в днк. Cин- и анти-конформации.
- •6.Альтернативные двухспиральные структуры днк. Параметры b-, a- и z-форм днк.
- •7. Положение атомов n7,o6,n6в пуринах – положение Хугстена. Хугстеновское спаривание – основа формирования триплексов днк(н-днк).
- •8. Явление суперспирализации днк. Образование супервитков в концевых молекулах днк – основа формирования третичной структуры.
- •9. Регуляция топологии днк in vivo. Днк-топоизомеразы. Классификация днк-топоизомераз.
- •11. Характеристика волокон хроматина диаметром 10 нм и 30 нм. Мономерная нуклеосома. Структурирующая роль гистонов в организации генома эукариот.
- •12. Классификация гистонов. Эволюционная стабильность гистонов н3 и н4. Роль оснóвных n-концевых «хвостов» гистонов в конденсации днк.
- •13. Первый уровень упоковки днк в хромосомею Минимальная нуклеосома( нуклеосомный кор). Нуклеосома. Гистон-ацетилтрансфераза нат.
- •15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
- •16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
- •18.Локус oriC – точка начала репликации. Структура локуса oriC. Предзатравочный комплекс. Роль белков dnaА, hu, dnaС и dnaВ в формировании предзатравочного комплекса.
- •19. Регуляция инициации репликации днк e. Coli. Dam-метилаза. Последовательности gatc. Терминация репликации.
- •20. Множественность точек начала репликации у эукариот. «Лицензирование» как механизм контроля согласованной активация точек начала репликации.
- •21.Точки начала репликации Saccharomyces cerevisiae. Аrs-элементы. Консервативные последовательности в составе ars-элементов.
- •23. Сборка предрепликационного комплекса. Комплекс днк-полимераза /праймаза. Инициаторная днк. Процессивный синтез днк с участием днк-полимеразы .
- •24. Системы рестрикции и модификации. Уникальный тип метилирования днк прокариот. Представление о метилированных, полуметилированных и неметилированных сайтах. Явление рестрикции днк.
- •25. Рестриктазы типа 2(класс 1). Характеристика рестриктазы Eco r1. Природа сайтов узнавания и рестрикции. «Липкие» и «тупые» концы.
- •26. Молекулярная основа мутаций. Точечные мутации. Транзиции и трансверсии. Горячие точки. Молчащие мутации. Нейтральные мутации.
- •27. Причины мутаций. Таутомерные формы оснований. Дезаминирование оснований. Апуринизация днк. Алкилирующие агенты.
- •28. Действие физических факторов (влияние на равновесие амино – имино-форм). Ошибки днк-полимеразы, связанные с включением аналогов природных нуклеотидов.
- •29. Система коррекции несоответствий спаривания оснований. Роль последовательностей gatc в mismatch репарации.
- •30. Эксцизионная репарация оснований. Ар-сайты. Днк-гликозилазы. Удаление урацила и тимина. Субстратная специфичность днк-гликозилаз ung, hGmug1, tdg и mbd4 человека.
- •31. Эксцизионная репарация нуклеотидов. Удаление пиримидиновых димеров. Нуклеаза авс (авс-эксцинуклеаза). Компоненты авс-эксцинуклеазы – белки UvrА, UvrB, UvrC. UvrD-геликаза.
- •33. Репарация, включающая рекомбинацию. Sos-ответ. Понятие sos-генов. Ферменты и белки sos-репарации. Белки RecA и LexA.
- •35.Строение информационных рнк. Строение информационных рнк прокариот. Лидерные, трейлерные и кодирующие участки. Полицистронность иРнк прокариот.
- •36. Строение иРнк эукариот. Структурные элементы иРнк эукариот. Полиаденилирование и кэпирование иРнк. Структура кэпов. Метилирование кэпов.
- •37.Специфические участки взаимодействия рнк-полимераз с днк. Структура промоторов. Стартовая точка, положения по ходу транскрипции и положения против хода транскрипции. Блок Прибнова и –35-блок.
- •38. Классификация рнк-полимераз эукариот.
- •39. Промоторы эукариот. Блок Хогнесса. –70-блок.
- •40.Закрытый и открытый двойные комплексы. Тройной комплекс. Роль σ-фактора.
- •41. Терминация транскрипции. Ρ-зависимые и ρ-независимые терминаторы.
- •42. Прерывистость генов э. Процессинг и сплайсинг транскриптов рнк-полимеразы II.
- •43. Интроны, подчиняющиеся «правилу gu/ag». Донор сплайсинга и акцептор сплайсинга. Точка ветвления интрона. Малые ядерные рнк (мяРнк) и сплайсисома.
- •44.Процессинг транскриптов, синтезируемых рнк-полимеразой III.
- •45. Механизм сплайсинга тРнк. ТРнк-лигаза.
- •47. Представления об интронах группы I как о рибозимах. Самосплайсинг рРнк Tetrahymena thermophila.
- •48. Интроны группы II – второй класс самосплайсирующихся интронов. Явление рнк-интерференции и редактирование рнк.
- •49. Экспериментальная расшифровка генетического кода. Синтетические олигонуклеотиды. Метод связывания рибосом.
- •50. Периодические сополимеры Кораны. Установление значения терминирующих кодонов.
- •51. Строение тРнк. Пространственная l-форма тРнк. Минорные компоненты тРнк.
- •52. Гипотеза «качаний».
- •53. Активация аминокислот. Активные центры в аминоацил-тРнк-синтетазах. Аминоацил-тРнк-синтетазы – самокорректирующие ферменты.
- •54.Стадии активации ак.
- •55. Инициация трансляции. Инициаторные тРнк прокариот. Факторы инициации прокариот.
- •56. Элонгация. Факторы элонгации. Образование пептидной связи.
- •57. Терминация синтеза полипептидных цепей. Терминирующие кодоны. Rf-1 и rf-2 – белковые факторы терминации. Фактор терминации rf-3.
- •58. Перепрограммирование трансляции. Включение Se-цистеина как один из механизмов перекодирования трансляции. Уникальность структуры тРнкSeс п. И э.
- •59. Явление транс-трансляции. Бактериальная тм-рнк. Совмещение свойств транспортной и матричной рнк в тмРнк.
- •60. Методы промышленной микробиологии. Суперпродукция лизина.
- •61. Представления о принципах генетической рекомбинации с использованием подвижных генетических элементов.
- •62. Способы соединения фрагментов днк invitro. Метод линкеров. Коннекторный метод.
- •63.Понятие вектора. Векторы в генетической инженерии. Свойства «идеального» вектора.
- •64. Плазмиды, классификация плазмид. Структура сайтов рестрикции эндонуклеаз типа II. «Тупые» и «липкие» концы.
- •65. Трансформация, трансфекция, клонирование.
- •66. Способы получения днк для клонирования.
15. Доказательство полуконсервативного способа репликации днк. Эксперимент Месельсона и Сталя. Репликативная вилка. Одно- и двунаправленная репликация.
Синтез ДНК начинается с расхождения цепей, каждая из которых служит матрицей для синтеза дочерней цепи. Продуктами репликации являются две дочерние ДНК, каждая из которых состоит из одной родительской и одной дочерней цепи. Такой способ репликации был постулирован Уотсоном и Криком и назван полуконсервативным.
Месельсон и Сталь доказали это с помощью метода равновесной седиментации в градиенте плотности. Для этого E. coli выращивали в течение многих поколений в среде, где единственным источником азота был 15NH4Cl. В результате, весь азот 14N, содержащийся в исходной ДНК замещался на «тяжелый» 15N.
При длительном центрифугировании пробирок, содержащих возрастающие сверху до низу концентрации хлористого цезия, молекулы ДНК переходят в ту область градиента, в которой плотность раствора равна их собственной плавучей плотности и образуют четко выраженную полосу, которую легко обнаружить по поглощению в ультрафиолете.
В результате одного цикла репликации ДНК дает одну полосу. Отсутствие полосы, характерной для чистой 15N-ДНК говорило о том, что целостность родительской (15N-ДНК) ДНК в ходе одного акта репликации нарушается. Отсутствие полосы, характерной для чистой 14N-ДНК доказывало, что часть атомов во всех дочерних молекулах ДНК (гибриды, состоящие из 14N-ДНК и 15N-ДНК) происходит от родительской (15N-ДНК) ДНК. После второго акта репликации были получены две полосы ДНК, одна из которых соответствовала гибридной ДНК, а вторая – чистой 14N-ДНК.
Репликативная вилка – участок ДНК, имеющий Y-образную форму, который служит местом синтеза новых цепей ДНК при репликации. Репликативная вилка движется последовательно вдоль ДНК от стартовой точки - точки начала репликации.
Репликация может осуществляться либо в одном, либо в двух направлениях от стартовой точки. При однонаправленной репликации вдоль ДНК движется одна репликативная вилка. При двунаправленной репликации от точки начала в противоположных направлениях движутся две репликативные вилки.
Область, которая уже реплицирована, имеет вид глазка внутри нереплицированной ДНК. Этот глазок выглядит одинаково как в случае одной, так и в случае двух репликативных вилок. Если репликация двунаправленная, перемещаться будут оба конца глазка.
16. Типы репликации. Репликация кольцевых днк с образованием глазка. -структура. Репликация по типу катящегося кольца (репликация днк фагов м13, х174, ). Репликация с образованием d-петель.
В кольцевых молекулах ДНК репликационный глазок образует -структуру. Появившийся глазок постепенно расширяется по мере продвижения репликативной вилки, формируя -структуру. Нереплицированный сегмент уменьшается, что завершается разделением двух дочерних молекул ДНК.
Репликация по типу катящегося кольца: двухцепочечная кольцевая ДНК надрезается специфическим ферментом в уникальном сайте только одной цепи, и к образовавшемуся в результате надреза 3`-OH-концу с участием ДНК-полимеразы присоединяются дезоксинуклеотиды. Вследствие того, что матрицей служит интактная замкнутая цепь ДНК, в вилке синтезируется только лидирующая цепь. По мере синтеза лидирующей цепи происходит вытеснение 5/-конца исходной надрезанной родительской цепи. У фагов М13 или Х174, чьи зрелые геномы представлены одноцепочечными кольцевыми ДНК, данный способ репликации используется на поздних стадиях инфекционного процесса, после того как геномная кольцевая ДНК превращается в двухцепочечную форму. Постоянно отделяющиеся в результате репликации одиночные цепи ДНК приводят к образованию серии геномов, которые затем фрагментируются и встраиваются в фаговые частицы в виде одноцепочечных замкнутых зрелых форм. Освобождаемая отдельная цепь катящегося кольца может быть превращена в двухцепочечную ДНК путем синтеза комплементарной цепи - двухцепочечные конкатемерные молекулы, необходимые для созревания ДНК фага . На ранних стадиях инфицирования линейная вирусная ДНК превращается в кольцевую репликативную форму. Для образования линейной ДНК двухцепочечные кольца надрезаются и реплицируются, но вытесняемые одиночные цепи превращаются в двухцепочечные структуры. При упаковке ДНК в фаговые частицы в специальных участках конкатемеров (cos-сайтах) происходит разрезание.
Репликация с образованием D-петель: Репликация митохондриальных, хлоропластных ДНК начинается в специфической точке OriR. Cинтез инициируется путем образования праймерной РНК. Первоначально только одна цепь (H-цепь) используется как матрица для синтеза новой цепи. Синтез происходит только на коротком участке и вызывает вытеснение исходной комплементарной L-цепи, которая остается одноцепочечной – образуется D-петля. Вытесняемая часть L-цепи становится длиннее и расширяет D-петлю. Расширение продолжается до тех пор, пока не достигнет 67% длины кольца. Происходит раскрытие точки начала репликации в L-цепи. В сайте OriD инициируется синтез Н-цепи в противоположном направлении с использованием вытесненной L-цепи в качестве матрицы. Из-за задержки репликации дочерняя H-цепь синтезируется только на 30-40% длины кольца. В результате освобождается одна полная двухцепочечная кольцевая ДНК и одна кольцевая молекула, содержащая брешь. Далее брешь заделывается и остающиеся разрывы сшивается с участием лигаз.
17. ДНК-полимеразы E. coli (I, II, III, IV и V). Сравнительная характеристика ДНК-полимераз. ДНК-полимераза III – основной фермент репликации. Понятие процессивности.
Днк-полимераза I – не является основополагающим ферментом репликации, выполняет ряд доп.функций, принимает участие в репликации, рекомбинации и репарации. Скорость функционирования-60 нуклеотидов/мин. Обладает низкой процессивностью. Состоит из одной полипептидной цепи. Обладает 3-мя типами активности: полимеразной (3’), корректирующей (3’-5’-экзонуклеазной) и 5’-экзонуклеазной. Имеет 2 фрагмента: 36000Да(5’-экзонуклеазная активность) и 68000Да(полимеразная и 3’- корректирующая активность-фрагмент Кленова). Способна к Nick-трансляции- способность замещать один нуклеотид другим(с 5’-удалять, а к 3'-добавлять и т.д)
ДНК-полимераза II – не обладает 5’-экзонуклеазной активностью, обладает корректирующей и полимеразной. Принимает участие в специфическом способе репарации ДНК.
ДНК-полимераза III – основной фермент репликации. Включает 10 разных типов субъединиц. Ее холофермент состоит из двух кор-ферментов (состоят из α(полимеризующая активность) ,ε (3’-корректирующая),θ (основа для их объединения). Два кор-фермента связаны в димер с помощью γ-комплекса (состоит из τ2γδδ’χψ) – структурная часть на которой происходит сборка скользящего зажима(состоит из двух β-субъединиц). ДНК-полимераза III*-состоит из τ2γδδ’χψ, т.е она еще ненастоящая. Когда с каждым кор-ферментом взаимодейтсвуют димеры, содержащие β-субъединицы- настоящая ДНК-полимераза III. Вцелом холофермент связан с dnaB-геликазой, с помощью τ.
ДНК-полимеразы IV и V- сверхспецифические ферменты, т.к принимают участие в особых способах репарации ДНК: осуществляют репарацию, независимо от характера повреждения.
Процессивность- среднее количество нуклеотидов, присоединяемых ДНК-полимеразой за один акт связывание с матрицей.
