Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
ПРАКТИКУМ по МИКРЕ.doc
Скачиваний:
19
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
3 Мб
Скачать
☆

Определение подвижности микроорганизмов.

Для определения подвижности бактерий применяют методы «висячая капля» и «раздавленная капля».

Метод «висячая капля». Каплю 18...20-часовой бу­льонной культуры или каплю конденсата агаровой культуры нано­сят на покровное стекло. Специальным предметным стеклом с уг­лублением (луночкой), края которого слегка смазывают вазели­ном, накрывают каплю культуры так, чтобы покровное стекло прилипло к предметному стеклу. Препарат перевертывают по­кровным стеклом вверх, и капля «висит» над луночкой (рис. 14).

Микроскопируют препарат в сухой системе объективов при слегка затемненном поле зрения (пользуются диафрагмой и опущенным конденсором). Под малым увеличением находят край капли, затем, приподняв тубус, переводят в рабочее со­стояние объектив среднего увеличения (40...60), осторожно, под контролем глаза (смотреть сбоку) опускают тубус до со­прикосновения фронтальной линзы объектива с покровным стеклом. Затем, глядя в оку­ляр, осторожно поднимают макрометрическим винтом тубус и находят в поле зрения каплю. Далее микрометрическим винтом настраивают мик­роскоп до оптимальной види­мости микробов. Рис. 14. Препарат «висячая капля.

Метод «раздавленная капля». На обычное пред­метное стекло наносят каплю суточной бактериальной культуры, осторожно накрывают покровным стеклом так, чтобы между стек­лами не образовались пузырьки воздуха, а капля культуры не рас­теклась за края покровного стекла. Осторожно опускают объектив среднего увеличения и микроскопируют.

В обоих случаях на сероватом фоне поля зрения хорошо замет­но движение микробных клеток.

Приготовление красителей и окраска мазков-препаратов. Методы пересева мик­роорганизмов.

Микроскопируют микробы в живом и нежи­вом состоянии. Для изучения морфологических и тинкториаль-ных свойств микроорганизмов готовят специально окрашенный препарат, применяя для этого различные анилиновые красители.

Краски и красящие растворы. Наиболее часто в микробиологи­ческой практике используются следующие анилиновые краски: фуксин (основной), метиловый красный, нейтральный красный — в растворе имеют красный цвет; карболовый кристаллвиолет, ме-тилвиолет, генцианвиолет, готовая жидкая краска Гимза (азур-эозин) фиолетового цвета; метиленовая синь, бриллиантовая и малахитовая зелень.

Из сухих кристаллических или порошкообразных красителей гото­вят водные или спиртовые растворы красок. Последние обычно гото­вят впрок, так как они хорошо сохраняются в темноте (посуда из тем­ного стекла, темное помещение). Для усиления действия красящих растворов на микробную клетку используют различные протравители, которые добавляют в раствор красителя (фенол, едкий калий) или ими обрабатывают препарат перед окрашиванием (слабые растворы соля­ной, серной или хромовой кислот). Также с целью протравливания препарат с налитой на него краской прогревают или заливают предва­рительно подогретым раствором краски. Краски, нестойкие в раство­ре, не сохраняющиеся длительное время, готовят только непосред­ственно перед употреблением в виде 1 ...2%-го раствора.

Спиртоводные растворы. Карболовый фуксин (фук­син Циля). Кристаллы основного фуксина предварительно раство­ряют в 96%-м этиловом спирте. Сначала готовят насыщенный спиртовой раствор (на 5...10 г краски 100 мл спирта). Для лучшего и более быстрого растворения кристаллы краски предварительно растирают в фарфоровой ступке в небольшом количестве спирта с добавлением нескольких капель глицерина. Чисто спиртовой ра­створ для окраски непригоден, поэтому готовят спиртоводный ра­створ: к 10...20 мл насыщенного спиртового раствора фуксина до­бавляют 100 мл дистиллированной воды с 5 % фенола (протрава). Полученный раствор фуксина фильтруют через фильтровальную бумагу. В ряде случаев фуксин Циля перед использованием раз­бавляют еще раз дистиллированной водой (1:10) и получают его рабочий раствор (фуксин Пфейффера).

Карболовый кристаллвиолет, метипвиолет, генцианвиолет. Пер­вые два красителя в растворе очень быстро выпадают в осадок и при окрашивании могут исказить микроскопическую картину. Чаще используют генцианвиолет, который получают смешением метил- и кристаллвиолета с добавлением декстрина; он дает более ровное окрашивание. Для приготовления спиртоводного раствора 1 г сухого генцианвиолета растворяют в 10 мл спирта, растирая в ступке с глицерином и кристалликами фенола (2 %), затем добав­ляют дистиллированную воду. Чтобы избежать образования осад­ка при хранении раствора, листы фильтровальной бумаги пропи­тывают насыщенным спиртовым раствором краски, высушивают их на воздухе, нарезают мелкими полосками или квадратиками и сохраняют в темной банке с притертой пробкой.

При окраске препарата на него накладывают высушенную по­лоску с генцианвиолетом, сверху наливают несколько капель воды, выдерживая 2...3 мин.

Раствор метиленовой сини (щелочная синь Леффлера). Для приготовления раствора 3 г краски настаивают длительное время (3...4 мес) в 100 мл 96%-го спирта, затем 30 мл насыщенного ра­створа разбавляют в 100 мл дистиллированной воды, содержащей 1 мл !%-го раствора едкого калия (протрава). Фильтруют.

Водные растворы. 2%-й сафранин: 2 г сухого красителя заливают 100 мл горячей дистиллированной воды, фильтруют че­рез бумажный фильтр и сразу используют свежий раствор для ок­рашивания.

1%-й раствор малахитовой зелени: 1 г кристаллической краски растворяют в 100 мл горячей дистиллированной воды, фильтруют ее, остужают и используют для окрашивания.

Готовую жидкую краску азур-эозин (краска Гимза) применяют при специальных методах окрашивания бактерийных препаратов. Перед употреблением ее необходимо разбавить дистиллированной водой (1:10), но при этом сразу образуется осадок. Чтобы последний не влиял на препарат, окрашивание проводят, по рекомендации Романовского, следующим образом: на дно чашки Петри кладут стеклянные палочки или спички с обломанными головками, на них помещают препарат мазком вниз, раствор краски подливают под препарат (метод Романовского—Гимза).