- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
разделения методом ТСХ и денситометрии. Получаем поправочный коэффициент (табл. 27).
Аналогичный поправочный коэффициент можно рассчитать и для подклассов фосфолипидов. Хроматограммы, полученные на стекле, можно записывать только на сканиметре. Сначала проводят запись одной пробы, затем другой и т. д., постепенно передвигая пластинку под лучом проходящего света. Результаты регистрируют в процентах.
Для каждого прибора и (или) режима исследований должны быть выведены свои поправочные коэффициенты.
Источник: 6.
3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
Принцип. В основе метода ГЖХ лежат физико-химические свойства летучих соединений по-разному распределяться между двумя фазами: подвижной (инертный газ) и неподвижной (жидкой), нанесенной на поверхность порошкообразного твердого носителя определенного зернения и определенных адсорбционных свойств, где она распределяется в виде тонкой пленки с большой поверхностью и служит растворителем. Компоненты анализируемой смеси (смесь метиловых эфиров жирных кислот), перемещаясь по колонке с помощью газа-носителя, распределяются между газовой и жидкой средами и в соответствии с их коэффициентом распределения селективно удерживаются неподвижной жидкой фазой до тех пор, пока не образуется определенная зона (концентрация) в газе-носителе. Зоны отдельных жирных кислот последовательно выносятся из колонки газом-носителем, попадают в детекторное устройство, вызывают электросигнал, который регистрируется самописцем в виде пика и (или) цифрового изображения.
Реактивы: инертные носители неподвижной фазы для хро-матографической колонки: хромосорбы W, Р, G и Т, хромотой N, целит 545 и др. с величиной частиц 40/60, 60/80, 80/100 и 100/120 меш;
жидкие фазы, полярные и неполярные, которые должны обладать следующими свойствами (табл. 28);
ацетон;
хлороформ; гексан; бензол; диэтиловый
эфир; соляная кислота (ч. д. а.); метанол;
петролейный эфир; безводная смесь
Na2S04
и NaHC03
(2
: 1); стандартная
смесь метиловых эфиров жирных кислот;
метилирующая смесь: 0,5
н.
раствор натрия мети-лата (CH^ONa),
или 0,3
н.
хлористый водород в абсолютном
метаноле, или 0,3%-ный
раствор серной кислоты (H2SO4)
в
абсолютном метаноле.
Оборудование:
газожидкостный хроматограф отечественного
или зарубежного производства. Прибор
состоит из: а) хро-матографической
колонки (металлической или стеклянной),
содержащей неподвижную фазу, в
которой на входе располагается камера
ввода анализируемого материала, а на
выходе — детектор; б) термостатической
камеры, обеспечивающей стабильную
заданную температуру для
хроматографической колонки; в) самописца;
г) баллонов с газом-носителем, водородом
и воздухом (для горючей смеси);
микрошприцы
(марки Гамельтона) отечественного или
зарубежного производства для
введения анализируемого материала в
камеру — испаритель хроматографа;
запасные хроматографиче-ские колонки;
расходометр — для определения скорости
поступления газа-носителя, водорода,
воздуха; силиконовые прокладки для
герметизации колонок; пробирки с
притертыми пробками на 10
мл;
пипетки на 1,
2, 5 и
10
мл;
пипетки бактериологические; груша
резиновая (малая); стеклянные ампулы
на 10
и
15
мл;
колба Бунзена.
Ход
определения.
После установки и наладки всех
(электронных и механических) систем
прибора, что выполняется специально
подготовленными инженерами, его
подготавливают к работе в соответствии
с целью и задачами исследований. В
подготовительную работу входит:
подготовка хроматографической ко-
Жидкая фаза |
Максимальная рабочая температура, 'С |
Растворитель |
Диэтиленгликольсукцинат (полярная) |
190 |
Ацетон |
Диэтиленгликольадипат (полярная) |
190 |
Хлороформ |
Полиэтиленгликольсукцинат (полярная) |
200 |
Хлороформ, ацетон |
Полиэтиленгликольадипат |
200 |
Ацетон, хлороформ |
Апиезон D (неполярная) |
300 |
Хлороформ |
лонки; выбор режима работы прибора и подготовка метиловых эфиров жирных кислот для их разделения.
Подготовка колонки. Эффективность разделения эфиров жирных кислот в значительной степени определяется качеством подготовки хроматографической колонки: ее внутренним диаметром, длиной и качеством набивки (носителем и жидкой фазой). Чаще всего используют металлические колонки (они надежнее стеклянных) с внутренним диаметром 3—5 мм и длиной от 1 до 3 м. Предварительно колонка должна быть тщательно промыта и высушена. Для промывки применяют чистые, профильтрованные реагенты в следующем порядке:
1) 1%-ный раствор поверхностно-активных веществ типа ОП-7, ОП-10, ТВИН-60 или ТВИН-80 в дистиллированной воде (трех- кратно);
дистиллированную воду (трехкратно);
ацетон или метанол (двукратно);
бензол (двукратно);
диэтиловый спирт (двукратно);
6) растворитель, в котором будет растворяться неподвижная жидкая фаза (трехкратно).
После этого колонку продувают азотом и помещают в сушильный шкаф при температуре 70—80 °С на 1 ч.
Готовят наполнитель для колонки. Для этого подбирают соответствующую жидкую фазу и 5—15 % ее наносят на выбранный инертный носитель. Необходимое количество жидкой фазы (например, 10 г), растворенной в соответствующем растворителе (хлороформ или ацетон), вносят в круглодонную колбу со шлифом и туда же добавляют определенное количество (например, 100 г) твердого носителя. Колбу присоединяют к роторному испарителю и при вращении выпаривают растворитель полностью. Инертный носитель, пропитанный жидкой фазой, раскладывают тонким слоем на фильтровальной бумаге и подсушивают под вытяжным шкафом, а затем в термостате при 80—100 "С до хорошо выраженной сыпучести. В таком виде наполнитель готов для использования.
Колонку заполняют следующим образом. Один конец закрывают стеклянной ватой (на глубину 0,7—1,5 см) и присоединяют к вакуумному насосу, а к другому присоединяют воронку (через резиновую трубку). Наполнитель засыпают через воронку при постоянном постукивании палочкой до тех пор, пока колонка не заполнится полностью, после чего открытый конец закрывают стеклянной ватой. Наполнитель должен заполнить колонку достаточно плотно, без пустот. Для его уплотнения колонку можно присоединить к баллону с азотом и на 1—2 мин пустить с напором газ, постоянно постукивая палочкой.
После этого колонку вставляют в хроматограф и подвергают «тренировке», которая сводится к прогреванию ее в течение 15—20 ч при температуре несколько более высокой, чем та, при которой она будет работать, но ниже допустимой для данной жидкой фазы. В противном случае последняя улетучивается. Во время прогревания колонки через нее пропускают слабый поток газа-носителя (5—10 мл/мин). При этом второй конец колонки, обращенный к детектору, не присоединяют, чтобы исключить загрязнение последнего.
После завершения «тренировки» колонки нагреватель термостата выключают, охлаждают до комнатной температуры, не выключая газа-носителя, что предупреждает конденсацию влаги внутри колонки при охлаждении. Затем колонку присоединяют к детектору, прибор включают и выводят на рабочий режим, на котором предусматривается разделение метиловых эфиров жирных кислот. В рабочий режим прибора входят следующие параметры: температура, скорость подачи газа-носителя, водорода и воздуха. От правильной установки и поддержания режима работы зависит качество разделения жирных кислот.
Выбор режима работы прибора. Для каждой марки хроматографа устанавливают свой режим, но чаще всего такой: температура колонки 160—190 "С, испарителя 220—240 °С, поток газов: носителя — 30— 75 мл/мин, водорода — 40—60 и воздуха — 300—400 мл/мин. Для стабилизации режима работы прибор включают и прогревают при заданной температуре 1,5—2 ч. До прогревания прибора следует убедиться, что в газовой системе нет утечки газов. Для этого все контакты колонки с баллонами и прибором смазывают мыльной пеной. После прогревания нужно убедиться в стабильности температуры термостата и базисной линии самописцев. С этой целью в колонку 2—3 раза вводят микродозы (1—3 мкл) хлороформа или гексана, для чего пользуются специальными микрошприцами вместимостью от 1 до 10 мкл.
Приготовление метиловых эфиров жирных кислот. Поскольку жирные кислоты нелетучие соединения, их перед введением в хроматограф следует перевести в летучие — метиловые эфиры. Приводим два наиболее удобных и быстро выполнимых способа метилирования жирных кислот.
1. Липидный экстракт в дозе, соответствующей 5—20 мг чистых липидов, вносят в пробирку с притертой пробкой и выпаривают растворитель струей азота. В пробирку добавляют 2 мл 0,5 моль/л натрия метилата, закрывают и оставляют стоять при комнатной температуре 30—40 мин или подогревают на песочной бане до 50—55 °С. Реакцию останавливают добавлением 0,2 мл 6 моль/л раствора НС1.
Затем в пробирку вносят 4 мл петролейного эфира и 4 мл дистиллированной воды, закрывают и содержимое энергично встряхивают, дают отстояться и с помощью бактериологической пипетки с резиновой грушей верхний петролейный слой переносят в пе-нициллиновый флакон с сульфат-карбонатной смесью и сушат 10 мин. После этого петролейный эфир и растворенные в нем метиловые эфиры переносят в короткую пробирку с притертой пробкой, петролейный эфир удаляют струей азота, а оставшиеся метиловые эфиры растворяют в 2—3 каплях хлороформа, гексана, сероуглерода или в другом подходящем растворителе и с помощью шприца вводят в хроматограф (0,5—1 мкл).
2. В ампулу вносят 5—20 мг липидов, раствор испаряют струей азота и добавляют 2 мл метилирующей смеси (0,3 н. раствор хлористого водорода или 3%-ный раствор серной кислоты в абсолютном метаноле). Ампулу запаивают на газовой горелке и помещают в термостат на 1—2 ч при температуре 105 °С. После охлаждения содержимое ампулы небольшими порциями переносят на бумажный фильтр и быстро просушивают под феном. Затем фильтр сгибают на угол и метиловые эфиры осторожно смывают гексаном (5—6 мл) в пробирку. Гексан удаляют струей азота (при 45—50 °С) до минимума, а сконцентрированные метиловые эфиры (соломенного цвета) используют для анализа.
Примечания. Метилирующие смеси в лабораторных условиях готовят следующим образом:
1) для приготовления 0,5 моль/л раствора натрия ме- тилата (CH3CONa) осторожно растворяют 2,299 г металлического натрия в 100 мл абсолютного мета- нола;
для приготовления 3%-ного раствора серной кислоты 1,63 мл H2SO4 (ч. д. а.) растворяют в 100 мл абсолютного метанола;
для приготовления 0,3 н. хлористого водорода поступают следующим образом. В колбу Бунзена на 0,5 или 1 л вносят 200—250 г натрия хлорида (NaCl), закрывают ее корковой или резиновой пробкой с отверстием, в которое вставляют делительную воронку на 200 мл, наполненную концентрированной серной кислотой (100—150 мл). По мере вливания (по каплям) кислоты в колбу с натрия хлоридом происходит реакция с выделением газообразного хлористого водорода, который через резиновый шланг, надетый на боковой отросток колбы и заканчивающийся стеклянной пипеткой, отводят во флакон с метанолом (через резиновую пробку), насыщая его до указанной выше концентрации. По завершении реакции в колбочку отбирают 10—15 мл метанола, вносят 1—2 капли индикатора Ташира и титруют 0,1 н. раствором NaOH для определения концентрации НО;
если метиловые эфиры или липиды требуют хранения, то их следует продуть азотом, ампулы запаять, а пробирки закрыть пробками и залить парафином. Поместить в герметически закрывающуюся емкость и хранить в холодильнике;
если ставится цель изучить жирнокислотный состав отдельных классов липидов (фосфолипидов, триацилглицеринов, НЭЖК, эфиров холестерина) или подклассов фосфолипидов, то предварительно их разделяют методом ТСХ на стеклянной пластинке (для количественного анализа). Экстрагируют определенным растворителем и метилируют любым указанным выше способом.
Разделение, идентификация жирных кислот и расчет площади их пиков. Пробу метиловых эфиров жирных кислот вводят в колонку специальным микрошприцем через самоуплотняющуюся резиновую мембрану инжектора путем быстрого нажатия на поршень. Если предусматривается получить только процентное соотношение жирных кислот в пробе, то точность объема вводимой пробы не имеет значения (однако он должен быть оптимальным). При калибровке прибора объем пробы должен быть точно измерен.
Как указывалось выше, смесь метиловых эфиров, проходя по колонке с газом-носителем, селективно удерживается жидкой фазой и распределяется в колонке по мере увеличения длины их углеродной цепи. Выходя из колонки, метиловые эфиры отдельных жирных кислот попадают в детектор и изменяют в нем электропроводность.
В настоящее время в лабораторной практике наибольшее применение получили газожидкостные хроматографы с пламенно-ионизационными детекторами и детекторами по теплопроводности (катарометрами).
Принцип работы ионизационных детекторов основан на том, что электропроводность газа прямо пропорциональна концентрации в нем заряженных частиц. Жирная кислота, выходящая из колонки в виде газа, смешивается с водородом и сжигается в атмосфере воздуха или кислорода. Ионы и электроны, образованные в пламени, попадают в межэлектродное пространство, уменьшают его сопротивление, в результате чего во внешней цепи возникает ток (электросигнал). Последний через усилитель регистрируется самописцем в виде соответствующих пиков.
Пламенно-ионизационный детектор чувствителен фактически ко всем соединениям, за исключением Не, Аг, Кг, Ne, Хе, 02, Cs2, COS, SiHCl3, SiF4, H2S, S02, NO, N20, N02, NH3, CO, C02, H20, SiC^.
Принцип работы детектора по теплопроводности основан на том, что нагретое тело теряет тепло со скоростью, зависящей от состава окружающего газа, поэтому скорость теплоотдачи используется здесь для определения состава газа. Основным элементом катарометра служит металлическая нить, скрученная в спираль и расположенная внутри камеры в металлическом блоке. Нить нагревают, пропуская через нее постоянный ток. Температура нити определяется равновесием, устанавливающимся между входной электрической мощностью (IB) и мощностью тепловых потерь, связанных с отводом тепла окружающим газом. При пропускании через детектор чистого газа-носителя потеря тепла постоянная, поэтому температура нити также постоянная. При наличии в газе-носителе анализируемого вещества температура нити изменяется, что вызывает соответствующее изменение электрического сопротивления, передающегося на самописец.
Пламенно-ионизационный детектор во много раз чувствительнее катарометра.
В тех случаях, когда проба анализируемого вещества растворена в хлороформе или гексане, через несколько секунд после ее введения в колонку сигнал детектора от растворителя регистрируется резким сдвигом пера самописца, а после ее выведения возвращается обратно до или почти до базисной линии. Если в качестве растворителя используется сероуглерод, то сигнал не регистрируется.
Через несколько секунд или минут самописец начинает записывать сигналы, обусловленные выходом метиловых эфиров жирных кислот, начиная с самых коротких (6 : 0, 8 : 0, 10 : 0) и кончая самыми длинными (20 : 4, 22 : 0 и т. д.).
При разделении жирных кислот на полярных жидких фазах сначала выходят насыщенные, затем ненасыщенные, а на неполярных фазах, наоборот, сначала выходят ненасыщенные, а затем насыщенные жирные кислоты.
Время от момента введения пробы в колонку до момента выхода той или иной кислоты называется временем относительного удерживания. Установлено, что время относительного удерживания очередной кислоты по сравнению с предыдущей увеличивается на величину, равную 1,56. Величины времени удерживания используются для идентификации пиков.
Некоторые жирные кислоты имеют близкое время относительного удерживания, однако у каждой из них только одно определенное время удерживания, не зависящее от присутствия других компонентов.
При соблюдении режима работы хроматографа (температура и скорость потока газов) воспроизводимость времени удерживания может составлять 99—100 %.
Д
анные
по относительному времени удерживания
метиловых эфиров жирных кислот на
полярной и неполярных фазах при разных
температурах приведены в таблице 29. От
полярности фазы в значительной степени
зависит качество разделения анализируемых
смесей жирных кислот.
Д
ля
разделения метиловых эфиров жирных
кислот, полярных соединений (фосфолипидов,
свободных жирных кислот, холестерина,
сфингомиелинов, а также жирных кислот
общих липидов) обычно используют
полярные фазы, а для разделения неполярных
соединений (триацилглицеринов) —
неполярные.
В зависимости от длины колонки, скорости потока газа-носителя и рабочей температуры время разделения смеси эфиров жирных кислот занимает от 40 до 60—70 мин. Чем короче колонка, выше температура и скорость потока газа-носителя, тем меньше время анализа. Однако при уменьшении длины колонки и повышении скорости газа-носителя разделение отдельных жирных кислот резко ухудшается. Поэтому длина колонки, скорость потока газа и температура должны быть оптимальными, что определяется качеством разделения. Чаще всего используют колонки длиной 1,5—2,5 м.
Идентификацию пиков жирных кислот на хроматограммах лучше всего проводить по стандартным смесям химически чистых метиловых эфиров жирных кислот. При этом следует начинать запись с простых смесей, содержащих 2—3, а затем 4—5 и больше жирных кислот, увеличивая их набор до максимума.
При отсутствии набора метиловых эфиров жирных кислот идентификацию проводят с помощью относительного времени удерживания отдельных жирных кислот, исходя из литературных данных (см. табл. 29).
Конечный результат разделения проб — определение абсолютного и относительного содержания в них отдельных жирных кислот. Оба эти расчета делают на основе установления площади того или другого пика, а также суммы площадей всех пиков. Поэтому правильное определение площади пика крайне важно. Существует несколько способов их вычисления на хроматограмме: 1) умножением высоты пика на ширину на половине его высоты (в мм); 2) вырезанием пиков и взвешиванием их (бумаги) на аналитических весах; 3) путем умножения высоты пика (мм) на относительное время удерживания кислоты в колонке хроматографа.
Наиболее признанным стал последний способ. За высоту пика с округлой вершиной берут точку пересечения двух линий, проведенных от базисной линии касательно боковых сторон пика. Полученную высоту (мм) умножают на время удерживания данного пика, которое определяется по расстоянию (мм) от момента введения пробы (первая реакция самописца) до центра (или верхушки) пика. Метод прост и дает точные результаты. Затем рассчитанные площади пиков суммируют (100 %) и рассчитывают долю (%) каждого пика (кислоты). При этом следует внести поправку на чувствительность детектора.
Первые пики, выходящие на самописце, обычно записывают на самой высокой чувствительности (это кислоты от 6 : 0 до 16 : 1— 17 : 1). Затем чувствительность загрубляют 2—8 раза (все зависит от концентрации метиловых эфиров и характера пробы) до выхода наиболее больших по размеру пиков (от 18 : 0 до 18 : 2). Затем чувствительность вновь повышают до максимума и на ней заканчивают запись остальных жирных кислот (от 18 : 3 до 20 : 4—22 : 0) (см. табл. 29). Если проводится анализ жирных кислот в липидах морских рыб, то после бегеновой кислоты (22 : 0) выходят 22 : 1, 22 : 5, 22 : 6, т. е. эруковая, докозапентаеновая и декозагексаеновая кислоты соответственно.
Поэтому нельзя отключать самописец ранее чем через 50—60 мин, а иногда выжидают и больше. Исследователь должен быть уверен, что все метиловые эфиры из анализируемой пробы вышли из колонки. Иначе колонка будет загрязняться и ухудшит разделение жирных кислот.
Если необходимо определить абсолютное количество жирных кислот, содержащихся в анализируемой пробе, то полученную площадь каждого пика умножают на поправочный коэффициент. Для этих целей готовят растворы жирных кислот известной концентрации (например, 5—10 мг/мл) в гексане или хлороформе и известное (точно!) количество вводят в колонку. После неоднократного повторения выводят среднюю величину площади пика той или иной кислоты. Такие средние величины, полученные для разных доз, позволяют вывести графическую зависимость площади пика от дозы кислоты (табл. 30).
