- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
Показатель
Время после рождения
1 ч
24 ч
48 ч
72-96 ч
20 сут
7
,3
± 0,01 7,41 ± 0,01 7,40 ± 0,01 7,42 ± 0,01 26,2 ± 0,89
30,9 ± 0,75 33,0 ± 1,08 31,8 + 1,40 39,4
52,41 1,749 48,7 + 1,25 49,7 ± 1,11 54,3 ± 2,1 54,5+1,46
0,4
6,76
5,25
8,83 + 0,82 11,3 + 0,93
В условиях нарушения технологии кормления и содержания коров в период сухостоя телята часто рождаются с рН крови 7,15—7,20 и средним уровнем бикарбонатов в ней 17 ммоль/л. Это свидетельствует о значительном дефиците щелочного резерва, что подтверждается отрицательным значением сдвига буферных оснований [СБО около (—)8,0]. Кроме того, отрицательное влияние на показатели кислотно-щелочного состояния крови неонатальных телят оказывает большая продолжительность течения отела коров и оказание помощи при отеле. Если отел коров продолжается около 10 ч, то рН крови телят уменьшается до 6,9—6,7, что становится опасным для их жизни.
Компенсация респираторно-метаболического ацидоза у телят происходит в течение первых 24 ч жизни благодаря различным механизмам. Уменьшение парциального давления С02 (рС02) крови сопряжено со становлением функции легких, а концентрация бикарбонатов увеличивается вследствие интенсивного поступления в организм щелочных эквивалентов с молозивом.
У телят, родившихся от коров с компенсированным или суб-компенсированным ацидозом, нормализация кислотно-щелочного баланса крови требует более длительного времени. Такие животные более склонны к острым желудочно-кишечным болезням в ранний неонатальный период жизни, ибо ацидемия (рН крови 7,30—7,33 по сравнению с 7,39—7,41 у здоровых) в течение первых 36 ч жизни угнетает интенсивность всасывания иммуноглобулинов из кишечника в среднем на 23 % [23].
Кислотно-щелочное равновесие у новорожденных телят, больных диспепсией и колибактериозом, характеризуется развитием метаболического ацидоза. Величина рН крови уменьшается при средней тяжести болезни до 7,28 + 0,01, при тяжелом течении — до 7,12 ± 0,03 (у клинически здоровых — 7,41—7,46). Концентрация бикарбонатов (НСО3 ) уменьшается с 37,6 ± 0,9 до 20,9 + 0,6 и даже 11,4 + 0,9 ммоль/л, буферных оснований — в 2—2,5 раза. Сдвиг буферных оснований при тяжелом течении эшерихиоза составляет (—)5,7 + 0,62, а при ассоциированной инфекции (эшерихиоз, рота-и коронавирусные энтериты) (—) 17,7 ± 1,7 ммоль/л, у 30 % телят СБО в пределах от (—)18 до (—)30 ммоль/л. Уменьшается рС02 до 33,2 + 0,9 мм рт. ст. по сравнению с 52,3 ± 2,4 у здоровых телят [23].
10.6. ФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ ПЕЧЕНИ У МОЛОДНЯКА
Интегрирующим показателем обмена углеводов служит содержание глюкозы в крови, количество которой у 10—20-дневных телят колеблется в пределах 2,2—4,2 ммоль/л [6]. У жеребят в течение первого года жизни уровень глюкозы постепенно уменьшается, стабилизируясь в 9-месячном возрасте [17].
С
одержание
общего билирубина в сыворотке крови
телят на 2—3-й дни жизни увеличивается
в 2 раза по сравнению с уровнем до первого
поения молозивом (табл. 88) [6].
В
дальнейшем, с 5-го дня жизни, количество
билирубина несколько снижается и
остается стабильным до 30-дневного
возраста. Конъюгированный билирубин
обнаруживается лишь у 20 % 5-дневных телят
в следовых количествах, а в дальнейшем
не определяется. Таким образом, печень
телят с 5-дневного возраста оперативно
выполняет функции глюкуронирования и
выведения конъюгированного билирубина
в желчные капилляры, а поэтому этот
период можно считать становлением
билирубинсинтезирующей и
билирубинвыделительной функций органа.
У жеребят количество билирубина в
первые дни жизни значительно больше,
чем у телят, его уровень постепенно
снижается и стабилизируется в месячном
возрасте. На этом уровне (5,0—18,0 мкмоль/л)
он поддерживается стабильно до
12-месячного возраста (табл. 89). В
отличие от телят в сыворотке крови
жеребят в небольшом количестве
определяется конъюгированный билирубин.
С 20-дневного до 6-месячного возраста
максимальное количество его не
превышает 8 мкмоль/л, а затем в последующие
6 мес — 4 мкмоль/л (см. табл. 89). Средний
показатель холебилирубина стабильный
с 5-дневного возраста: от 1,8 ± 0,4 до 3,5 +
0,52 мкмоль/л.
