- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
Глава 4
МЕТОДЫ КЛИНИЧЕСКОГО АНАЛИЗА
4.1. ИССЛЕДОВАНИЕ МОЛОКА (МОЛОЗИВА)
Отбор проб молока (молозива) для анализа. В связи с тем, что кислотность, содержание иммунных глобулинов, белков, витаминов, минеральных и других веществ в молозиве сильно меняется, исследование его проводят по удоям, начиная с первого. Молоко появляется на 7-е сутки после родов. Пробы молозива и молока берут только из здоровых долей вымени, поэтому перед взятием образцов проводят диагностику клинического и субклинического мастита.
Образцы молока берут из утреннего удоя, молозива — из первого, второго, третьего или последующих удоев. Отбирают среднюю пробу нужного объема, вносят в склянку и закрывают пробкой. Пробы в термосе со льдом доставляют в лабораторию, где обрабатывают с учетом характера проводимого анализа.
Метод обезжиривания молозива (молока). Многие биохимические показатели определяют в обезжиренном молозиве или молоке. Молозиво (молоко) центрифугируют при 3000—4000 мин 1 в течение 30 мин, после этого пробу ставят в морозильную камеру холодильника на 20—30 мин, затем через тонкую иглу со шприцем, не затрагивая слой жира, набирают нужное количество обезжиренного молозива или молока и проводят соответствующие исследования. Следует иметь в виду, что состав молозива и молока зависит во многом от срока лактации, условий кормления и содержания, состояния вымени. Лактацию с точки зрения изменения состава и свойств молока делят на три периода: молозивный (7 дней после отела коровы); период выделения нормального молока (285—277 дней) и период выделения стародойного молока (7 дней перед запуском коровы). В период сухостоя в вымени содержится секрет, состав и свойства которого иные, чем молозива и молока.
Определение титруемой кислотности молока (молозива) по Тернеру. Реактивы: 0,1 моль/л раствор натрия (калия) гидроксида. 4 г NaOH или 5,6 г КОН растворяют дистиллированной водой в мерной колбе на 100 мл;
1 %-ный раствор фенолфталеина. 1 г фенолфталеина растворяют в 70 мл 96%-ного этилового спирта и доводят объем водой до 100 мл;
2,5%-ный раствор кобальта сульфата. 2,5 г кобальта сульфата растворяют в 97,5 мл воды.
Оборудование: бюретка; колба или стакан на 100—200 мл; мерные колбы; пипетки на 10 и 25 мл.
Ход определения. Отбирают среднюю пробу молока утренней дойки или молозива 1, 2, 3-го или последующего удоя из здоровых долей вымени. В колбу или стакан на 150—200 мл вносят 10 мл молока (молозива), 20 мл дистиллированной воды и 3 капли 1 %-ного раствора фенолфталеина, перемешивают и титруют из бюретки 0,1 моль/л раствором натрия (калия) гидроксида до появления не исчезающего в течение 30 с розового окрашивания. В качестве эталона окраски можно использовать 2,5%-ный раствор кобальта сульфата. В колбочку вносят 10 мл молока (молозива), 20 мл дистиллированной воды, 1 мл 2,5%-ного раствора кобальта, перемешивают и ставят на белую бумагу рядом с бюреткой для титрования. Таким образом проводят визуальное сравнение окраски исследуемых проб молока или молозива.
Расчет ведут по формуле
х = А-10,
где х — кислотность молока (молозива), °Т, что равно числу мл 0,1 моль/л раствора натрия гидроксида, затраченного на нейтрализацию кислотности 100 мл молока (молозива); А — количество 0,1 моль/л раствора натрия (калия) гидроксида, пошедшего на титрование 10 мл молока (молозива), мл; 10 — коэффициент для пересчета кислотности в 100 мл молока (молозива).
Клиническое значение. Титруемая кислотность молока (молозива) обусловлена кислотным характером казеина, наличием в нем фосфорнокислых, лимоннокислых солей и растворенного углекислого газа.
У коров, содержащихся на полноценных рационах, кислотность молозива 1-го удоя равна 45—55 Т, 1-го дня — 39 °Т, 2-го дня — 33 Т; 3-го дня — 27,3 °Т; 6-го дня — 20,3 °Т; 7-го дня — 19,5 Т. Низкая кислотность молозива свидетельствует о неполноценном кормлении животных, скармливание такого молозива способствует развитию диспепсии новорожденных телят.
Кислотность свежего молока коровы 16—19 °Т, козы 17 °Т, овцы 23 Т, буйволицы 18,7 Т, зебу 19,5 Т, верблюдицы 17,2 °Т, кобылицы 6—6,5 Т, ослицы 6 Т. Этот показатель в основном характеризует свежесть молока, однако при ацидотическом состоянии у животных кислотность молока может повышаться. Титруемая кислотность молока в начале лактации может составлять 20 °Т, постепенно снижаясь в последнем месяце до 12—14 Т и ниже.
Определение иммунных глобулинов (Ig) в молозиве (молоке) с натрия сульфитом. Принцип. При воздействии на обезжиренное молозиво (молоко) раствора натрия сульфита изменяется структура белковых молекул и раствор мутнеет, его интенсивность пропорциональна концентрации Ig.
Реактивы: 18%-ный раствор натрия сульфита (ч. д. а). 18 г вещества растворяют в 82 мл дистиллированной воды;
10%-ный раствор уксусной кислоты. 10 г ледяной уксусной кислоты (СН3СООН) растворяют в 90 мл дистиллированной воды.
Оборудование: фотометры КФК-2, КФК-3, ФЭК и др.; мерные колбы; пипетки.
Ход определения. Молозиво (молоко) обезжиривают, отбирают, не затрагивая жира, примерно 2 мл обезжиренного молозива или 7 мл обезжиренного молока. Пробу молозива разбавляют дистиллированной водой в 2—4 раза. В обезжиренном разбавленном молозиве или неразбавленном обезжиренном молоке осаждают казеин и для получения прозрачного слоя центрифугируют или фильтруют через бумажный фильтр.
Д
ля
получения прозрачного центрифугата в
две центрифужные пробирки вносят по 5
мл обезжиренного, разбавленного молозива
или по 3,5 мл обезжиренного молока, по
каплям добавляют 10%-ный раствор уксусной
кислоты до осаждения казеина, размешивают
и через 5—10 мин центрифугируют 10—15 мин
при 3000 мин-1.
Прозрачный фильтрат получают путем
фильтрования через бумажный фильтр
пробы молозива (молока) после осаждения
казеина. В две параллельные пробирки
вносят по 3,8 мл 18%-ного раствора натрия
сульфита и по 0,1 мл прозрачного фильтрата
или центрифугата, смешивают и фотометрируют
на ФЭКе, КФК-2 при длине волны 440 нм в
кювете с толщиной слоя 5 мм против
раствора натрия сульфита (контроль).
Содержание Ig
находят по калибровочному графику,
построенному по определению Ig
в стандартной сыворотке с известной их
концентрацией, или пользуясь таблицей
М. А. Костыны (1983) (табл. 41).
Примечание. Изложенной выше методикой можно определять содержание Ig в сыворотке крови животных. В две (параллельные) пробирки вносят по 3,8 мл 18%-ного раствора уксусной кислоты и по 0,1 мл сыворотки, смешивают и колориметрируют при длине волны 400 ± 5 нм в кювете с толщиной слоя 5 мм против 18%-ного раствора уксусной кислоты.
Источник: 20.
Кл иническое значение. Содержание Ig в молозиве и молоке зависит от условий кормления и содержания животных, кроме того, от времени удоя после отела (опороса). Кормление беременных животных по рационам с дефицитом протеина, незаменимых аминокислот и других элементов питания, витаминов и микроэлементов, использование недоброкачественных кормов, несоблюдение оптимальной структуры потребления кормов ведет к снижению иммунных белков в молозиве и молоке. В практике наибольшее клиническое значение имеет определение Ig в молозиве, так как от их содержания зависит здоровье новорожденного молодняка.
Потребление молозива с низким уровнем Ig сопровождается слабым насыщением ими организма новорожденных, развитием иммунного дефицита, появлением массовых желудочно-кишечных, легочных заболеваний, в том числе и инфекционной природы.
В полноценном молозиве коров первого удоя содержание Ig составляет 50—100 г/л, в том числе IgG более 85 г/л, во втором удое — 28—56 г/л, или на 45 % меньше, чем в первом, в третьем удое на 75 % ниже, чем в первом, или около 13—25 г/л (L. Slanina, 1991). К седьмому дню после отела молозиво по составу Ig (5—7 г/л) приближается к молоку. В молозиве свиноматок Ig содержится 55—71 г/л (А. Хохлов, 1997).
Неполноценное молозиво содержит значительно меньше Ig, чем полноценное. По нашим данным, в зимне-весенний период в молозиве первого удоя коров, содержавшихся в сухостойный период на неполноценных рационах, уровень Ig составляет 10—15 г/л.
Методы определения соматических клеток в молоке. Для определения содержания соматических клеток в молоке применяют вискозиметр ВМЛК, анализатор молока «Сома-тос», электронный анализатор качества молока «КЛЕВЕР-1М», прибор ИСКМ-1, «Фоссоматик» и др., проводят подсчет клеток в камере с сеткой Горяева или определяют их примерное количество визуальным способом.
Определение соматических клеток в молоке с применением вискозиметра ВМЛК. Принцип. Метод основан на определении скорости вытекания смеси молока с раствором реактива «Мастоприм» через капилляр прибора, зависящей от содержания соматических клеток в молоке: чем их больше, тем медленнее вытекает жидкость.
Реактив: раствор «Мастоприм». 3,5 г препарата вносят в мерную колбу или в мерный цилиндр на 100 мл и доливают дистиллированной водой, подогретой до 30—35 "С до метки. Перед применением раствор взбалтывают. Годен в течение 1 сут.
Оборудование: вискозиметр ВМЛК; пипетки на 5 и 10 мл; колбы или цилиндры на 100 мл; весы лабораторные рычажные не менее 3-го класса точности, наибольший предел взвешивания 100 г, поверочная цена деления 0,001 г; термометры технические прямые № 4; стаканы химические на 50 и 500 мл.
Ход определения. Температура в лаборатории должна быть 10—30 °С, кислотность исследуемого молока 16—21 "Т. В сосуд вискозиметра вносят 5 мл водного раствора препарата «Мастоприм» массовой концентрации 35 г/л и 10 мл исследуемого молока, тщательно профильтрованного через четыре слоя марли. Нажимают кнопку «Пуск» и перемешивают смесь в течение 30 с. По окончании перемешивания через капилляр вытекает смесь с раствором «Мастоприм». Время вытекания определяют таймером. После анализа смеси сосуд прибора 2—3 раза промывают дистиллированной водой и 4—5 раз продувают с помощью резиновой груши. После очистки сосуда прибор считается подготовленным для исследования последующей пробы молока.
Количество соматических клеток в пробе молока устанавливают по времени вытекания смеси в соответствии с условиями, описанными в таблице 42.
