- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
Вид животного |
Плотность мочи |
Вид животного |
Плотность мочи |
Крупный рогатый |
1,02-1,055 |
Кошка |
1,020-1,040 |
скот |
|
Кролик |
1,010-1,045 |
Овца и коза |
1,015-1,065 |
Лисица |
1,016-1,040 |
Лошадь |
1,025-1,055 |
Песец |
1,018-1,034 |
Верблюд |
1,030-1,060 |
Норка |
1,040-1,060 |
Свинья |
1,018-1,022 |
|
|
Собака |
1,018-1,022 |
|
|
Относительная плотность мочи зависит от корма (жидкий, сухой), количества выпитой воды, потоотделения и многих других факторов. Увеличение относительной плотности мочи отмечают при недостаточном поении животных, усиленном потоотделении в жаркий период года, тяжелой работе, лихорадке, изнурительном поносе, выделении с мочой белка, сахара и других веществ в по-вышенном^количестве. Низкая плотность мочи обусловлена ослаблением концентрирующей или выделительной функции почек, возникающей, например, при несахарном диабете, нефросклерозе или при других заболеваниях почек, сопровождающихся нарушением выделения мочевины или натрия хлорида — основных растворимых в моче веществ. При развитии хронической почечной недостаточности способность почек к осмотическому концентрированию постепенно утрачивается, относительная плотность мочи понижается.
Химическое исследование мочи. Оно включает определение реакции (рН), обнаружение и определение белка, глюкозы, уробилинов, кетоновых тел и других веществ.
Определение рН. Концентрация свободных Н+-ионов — показатель истинной реакции мочи — активной кислотности (рН). Определяют рН в свежеполученной моче с помощью универсальной индикаторной бумаги, тест-пластин или (точно) потенциометром (рН-метр). Универсальная индикаторная бумага дает возможность определять рН в диапазоне от 1,0 до 10,0. Некоторые фирмы выпускают индикаторную бумагу специальных видов, предназначенную для определения рН мочи в диапазоне от 5,0 до 8,0, или комбинированные экспресс-тесты (бумажные или пластиковые полоски), которые включают кроме определения величины рН несколько других показателей. Индикаторную бумагу или комбинированные экспресс-тесты (экспресс-полоски) смачивают мочой и немедленно сравнивают появившуюся окраску со стандартной цветной шкалой. При использовании ионометра руководствуются соответствующей инструкцией.
При стоянии рН мочи сдвигается в щелочную сторону из-за распада азотистых соединений, выделения аммиака, соединения его с водой и образования щелочи, а также распада клеточных элементов.
Клиническое значение. В норме рН мочи у крупного рогатого скота 7,0—8,6, у лошадей 7,0—8,5, у овец и коз 7,0—8,5, у свиней 6,0—7,3, у собак и кошек 5,0—6,5. У молодняка молочного периода рН мочи немного ниже, чем у взрослых.
Моча приобретает кислую реакцию при содержании животных на высококонцентратных рационах, при ацидозе рубца, сахарном диабете, кетозе, хронической сердечной недостаточности, лихорадочных состояниях, миоглобинурии, остром гломерулонефрите, голодании, изнурительном поносе, почечной недостаточности, гипо-калиемическом алкалозе (недостаток калия увеличивает секрецию Н+-ионов почечными канальцами). Мочу щелочной реакции наблюдают при алкалозе рубца, хронических инфекциях мочевыво-дящих путей вследствие бактериально-аммиачного брожения (цистит, уроцистит, пиелонефрит).
Обнаружение белка и количественное определение его. Обнаружение белка в моче достигается пробой с сульфасалициловой кислотой, кипячением или использованием специальных экспресс-тестов.
Проба с сульфасалициловой 1ШСЛОТОЙ. Принцип. Проба основана на коагуляции белка с кислотой.
Реактивы: 20%-ный раствор сульфасалициловой кислоты.
Ход определения. В пробирку вносят 3—4 мл профильтрованной мочи и 5—6 капель 20%-ного раствора сульфасалициловой кислоты. Появление хлопьев или помутнения в пробе указывает на наличие белка (положительная проба). Чувствительность пробы 0,015 г/л.
Обнаружение белка в моче можно провести специальной тест-бумагой, содержащей буфер и индикатор, изменяющий в присутствии белка окраску от желтой к слабо-зеленой и зеленой.
Чувствительность около 0,06 г/л альбумина. Мультитестовые полоски могут быть использованы для обнаружения в моче альбумина, который появляется при нефропатиях.
Определение белка методом Брандберга—Робертса—Стольнико-ва. Принцип. В основу метода положена кольцевая проба Геллера, заключающаяся в том, что на границе азотной кислоты и мочи при наличии белка происходит его коагуляция и появляется белое кольцо.
Реактивы: 30%-ный раствор азотной кислоты (относительная плотность 1,2) или реактив Ларионовой. 20—30 г натрия хлорида растворяют при нагревании в 100 мл дистиллированной воды, дают остыть, фильтруют и к 99 мл фильтрата добавляют 1 мл концентрированной азотной кислоты.
Ход определения.В пробирку вносят 1—2 мл азотной кислоты (или реактива Ларионовой) и осторожно по стенке пробирки наслаивают такое же количество профильтрованной мочи. Появление тонкого белого кольца на границе двух жидкостей между 2—3 мин указывает на наличие белка в концентрации 0,033 г/л. Если кольцо появляется раньше чем через 2 мин после наслаивания, мочу разводят водой и повторяют исследование. Степень разведения подбирают в зависимости от вида кольца (ширины, компактности, времени появления): при нитевидном кольце, появившемся ранее 2 мин, мочу разводят в 2 раза, при широком — в 4 раза, при компактном — в 8 раз. Разведение подбирают так, чтобы при повторном наслаивании кольцо образовалось между 2—3 мин. Концентрацию белка находят путем умножения 0,033 на степень разведения.
Примечание. Белое кольцо может образоваться в присутствии большого количества уратов; в отличие от белкового уратное кольцо появляется несколько выше границы раздела и растворяется при слабом нагревании.
Турбидиметрический метод с сульфасалициловой кислотой. Принцип. Сульфасалициловая кислота вызывает коагуляцию белков с образованием мутности, интенсивность которой пропорциональна концентрации белка в моче.
Реактивы: 3%-ный раствор сульфасалициловой кислоты;
0,9%-ный раствор натрия хлорида;
калибровочный 1%-ный раствор альбумина. 1 г лиофилизиро-ванного альбумина (из бычьей или человеческой сыворотки) растворяют в небольшом количестве 0,9%-ного раствора хлорида натрия в колбе на 100 мл и доводят до метки тем же раствором, стабилизируют 1 мл 5%-ного раствора натрия азида. При хранении в холодильнике годен 2 мес.
Оборудование: фотоэлектроколориметр.
Ход определения. В 2 пробирки (опытная и холостая пробы) вносят по 1,25 мл профильтрованной мочи, приливают к опытной пробе до 5 мл 3%-ного раствора сульфасалициловой кислоты, к холостой пробе — до 5 мл 0,9%-ного раствора натрия хлорида, перемешивают. Через 5 мин измеряют экстинкцию опытной пробы на ФЭКе при длине волны 590—650 нм (оранжевый или красный светофильтр) против холостой пробы в кювете с толщиной слоя 5 мм.
Расчет ведут по калибровочному графику с концентрацией белка в растворах от 0,05 до 1,0 г/л. Приготовление растворов калибровочного графика приведено в таблице 44.
