- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
ACT,
нкат/л
М±т
АЛТ,нкат/л
М±т
ГГТ, нкат/л
М±т
ЩФ, нкат/л
М±т
568,0 ± 12,5 3,6-320,0 83,0 ± 18,9 11,0-220,0 НО ± 17,0
667,0 ± 36,1 11,0-270,0 86,0 ± 17,2 20,0-250,0 120,0 ± 14,0 5,8-19,0 10,53 ± 3,11
778,0 ± 16,7 17,0-180,0 105,5 ± 10,3 10,0-236,0 125,0 ± 17,0
5,5-15,0 10,90 ± 1,77
794,0 ±21,1 11,0-180,0 80,5 ± 8,6 20,0-280,0 130,0 ± 17,0 5,3-11,5 7,7 ± 0,69
817,0 ± 16,4 11,0-380,0 125,0 ± 11,7 70,0-270,0 130,0 ± 8,0 3,0-10,0 6,8 ± 0,6
П
римечание.
Активность ACT
и АЛТ определялась по методу Райтмана
и Френкеля, ГГТ — по Szazs,
ЩФ — в реакции гидролиза динатрийфенилфос-фата.
[19]. Активность фермента в первые 3 мес колеблется от 100,0 ± 10 до 130,0 ±18 нкат/л, а затем понижается, стабилизируется и в 12 мес ее максимальная активность не превышает 120 нкат/л (0,12 мккат/л).
Таким образом, функция печени у жеребят стабилизируется в разном возрасте. Вначале стабилизируется билирубинсинтетиче-ская и билирубинвыделительная (в 1-й месяц жизни), затем дезин-токсикационная (в 3-месячном возрасте), углеводная, липидная (в 6 мес) и белоксинтетическая (в 12 мес).
Н
екоторые
показатели функционального состояния
печени у жеребят даны в таблице 92 [41,
43], у
щенков собак служебных пород — в
таблице 93 [9],
у
поросят — в таблице 94 [10].
<
15,4-22,2-
8,5-20,5-13,7-12,0-
8,6-
12 ч Дни: 13
5
7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
13-39 18-43 9-40 8-89 14-64 16-169 16-132 17-99 8-38 0-27 0-27 0-30 0-26 0-26 5-28
2,9-2,9-3,7-3,3-3,7-4,2-1,9-2,1-2,6-2,9-2,4-1,32-2,1-0,3-1,5-
-11.2
■14,5
■9,0
-9,3
-11,5
■7,4
-7,1
■6,0
■6,3
•5,8
■5,4
•3,5
■4,5
■4,8
■2,8
5Д-5,1-
-47,9 -77,0 -66,7 -61,6 -51,3 -37,6 -27,4 -29,0 -34,2 -34,2 -17,1 -30,8
8,5-30,8
5,1-5,1-3,4-1,7-5,1-5,1-3,4-1,7-3,4-1,7-1,7-1,7-
-12,0
-13,7
-12,0
-12,0
-10,2
-8,5
-10,2
-8,5
-12,0
-10,2
-12,0
3,4-12,0
93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
Показатель
Щенки
Взрослые собаки
Общий белок, г/л Альбумины, г/л Билирубин, мкмоль/л ACT, ммоль/л АЛТ, ммоль/л ГГТ, мккат/л Мочевина, ммоль/л Креатинин, мкмоль/л
58,0-76 (70,6 ± 1,3) 34,2 + 1,8
1,76-7,7 (3,4 ± 1,4) 0,44-1,04 (0,82 ± 0,07) 0,47-1,1 (0,71 ± 0,08) 0,12-0,64(0,31 ± 0,11) 3,0-7,0 (5,5 ± 0,3) 40,0-150,0(103,0+14,4)
± 0,77
± 0,7 2,6 ± 0,19
0,72 + 0,03 0,83 ± 0,04 0,2 + 0,025 5,4 + 0,2 104,0 ± 4,2
10.7. НЕКОТОРЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ВИТАМИННОГО ОБМЕНА У МОЛОДНЯКА
Витамин А. Известно, что у сельскохозяйственных животных различных видов, кроме крупного рогатого скота, каротин в сыворотке крови не определяется не только у молодняка, но и у взрослого поголовья, поэтому диагностика А-витаминной недостаточности возможна только по уровню ретинола в сыворотке крови, печени, молозиве, молоке и желтках яиц. У новорожденных телят каротин также не определяется, а затем его уровень немного повышается, находится в пределах от 20—50 мкг/100 мл у 30-дневных до 150 мкг/100 мл у 3-месячных телят, но его содержание не коррелирует с содержанием ретинола в сыворотке крови, и поэтому определение каротина не имеет диагностического значения. У 3—5-дневных телят содержание витамина А в сыворотке крови колеблется в пределах от 9 до 15 мкг/100 мл, у 30-дневных — 12,5—25; 2—3-месячных — 15—35 мкг/100 мл [5, 31], у животных старше 6-месячного возраста — 30—80 мкг/100 мл [40]. У поросят содержание витамина А в сыворотке крови составляет 20—50 мкг/100 мл [2].
Молодняк отличается также содержанием ретинола в печени. У однодневных телят он составляет 6—10 мкг/г, у 9—12-месячных — 30—90; у однодневных поросят — 9—12 зимой и 15—17 мкг/г летом, у 2-недельных поросят — 12—20, у 1—2-месячных — 15—30, в группе выращивания — 25—60 мкг/г [2].
Содержание ретинола в печени суточного молодняка птицы является объективным критерием обеспеченности маточного поголовья витамином А (коэффициент корреляции для разных видов составляет 0,96—0,99). В печени суточных цыплят содержание его находится в пределах 20—30 мкг/г, в печени утят — 12—80, гусят — 25—140, индюшат — 40—50, у молодняка кур не менее 60 мкг/г [2].
Витамин D. Известно 6 витаминов группы D: Dt—D7. Наиболее распространенными в природе являются витамин Ъ2 (эргокальци-ферол) и D3 (холекальциферол). Биологическая активность их отличается: активность витамина D3 для животных различных видов в 10—100 раз выше, чем витамина D2. Оба витамина биологически инертны и являются лишь предшественниками активных метаболитов. Первый из них — 25OHD3 (или 250HD2) синтезируется в печени, другие — 24,25(ОН)2Оз и l,25(OH)2D3 — в почках. Наиболее активный метаболит — 1,25(ОН)2Оз — 1,25-дигидроксихоле-кальциферол (кальцитриол).
Сведения об уровне метаболитов в крови животных, в частности молодняка, довольно ограничены. У молодняка крупного рогатого скота содержание 25OHD3 составляет 30—70 нг/мл, у телят, больных рахитом, — 7—14 нг/мл [20], у птицы — около 10 нг/мл. Среднее содержание метаболитов витамина D приведено в таблице 95 [42].
95. Содержание витамина D3 н его метаболитов в нлазме крови молодняка животных (Е. Kolb, Е. G^,,)
Показатель
КРС
Овцы
Свиньи
Собаки
Витамин d3, нг/мл 25(OH)D3, нг/мл 24,25(OH)2D3, нг/мл l,25(OH)2D3, пг/мл
1,7 ± 0,7 36,9 ± 7,1
2,6 ± 0,7 38,0 ± 10,0
0,6 ± 0,5 12,9 ± 5,3
4,3 ± 0,7 36,0 ± 30,0
10,2 ± 4,1 75,0 ± 21,0 20,2 ± 10,3 60,0 ± 7,0
2,3 + 0,3 25,3 ± 3,9
2,3 + 0,2 21,0 ± 2,0
Следует отметить, что у собак и кошек витамин D3 в коже под влиянием ультрафиолетового облучения не синтезируется. У молодняка животных кроме экзогенных факторов в патологии D-ви-таминного обмена существенное значение имеют эндогенные: а) уменьшение всасывания витамина в кишечнике при хроническом гастроэнтерите; б) уменьшение синтеза 25OHD3 в печени при ге-патодистрофии, гепатите, циррозе; в) нарушение синтеза метаболитов в почках при их поражении; г) генетические нарушения синтеза 1,25(ОН)20з; д) нарушение синтеза рецепторных белков в органах-мишенях к активным метаболитам витамина D [2].
Токоферол. Известно 7 соединений, имеющих биологическую активность токоферола. Наиболее активен а-токоферол. При дефиците токоферола в кормах у цыплят, утят и индюшат развивается энцефаломаляция с типичным поражением мозжечка. Кроме того, у молодняка 2—4-недельного возраста при одновременном дефиците селена развивается экссудативный диатез, у утят — мышечная дистрофия, нефроз и язвы гладких мышц мышечного желудка, часто — пероз, у поросят и ягнят — мышечная дистрофия. В 100 мл сыворотки крови клинически здоровых телят содержится 0,3—0,7 мг токоферола, ягнят — не менее 0,25, птицы — 0,9—1,0, поросят — 0,2—0,4 мг.
Тиамин (витамин В|). У взрослых жвачных тиамин синтезируется микроорганизмами преджелудков, у моногастричных животных — в толстом кишечнике. У телят до 3—4-месячного возраста и молодняка при жомовом откорме и животных других видов синтез тиамина недостаточный. Кроме того, у поросят при гепатодистрофии нарушаются процессы фосфорилирования свободного тиамина в ге-патоцитах и количество биологически активных соединений тиамина, особенно тиаминдифосфата (кокарбоксилазы), уменьшается [4]. При дефиците тиамина в клетках головного мозга нарушается обмен углеводов, уменьшается превращение пировиноградной кислоты. Кроме нее в нейронах накапливается молочная и глиоксановая кислоты, развивается некроз нейронов (кортико-церебральный некроз), который особенно выражен у телят, ягнят и пушных зверей.
В сыворотке крови клинически здоровых телят содержится 7—15 мкг/100 мл тиамина, у новорожденных поросят — 10—25, а тиаминдифосфата — 5—10 мкг, у отъемышей соответственно
20—35 и 10—25 мкг/100 мл. При недостаточности тиамина в сыворотке крови повышается содержание пировиноградной (у телят более 1,7 мг/100 мл, в норме — 0,8—1,5, у норок до 3,5—5,0 мг/100 мл по сравнению с 1,6—2,4 у здоровых) и молочной (свыше 13 мг/100 мл, или 1,44 ммоль/л) кислот. Содержание тиамина в печени больных телят меньше 20 мкг/100 г, новорожденных поросят — 30, отъемы-шей — 40, норок — 100, песцов — 60, нутрий — 30 мкг/100 г [2].
Рибофлавин (витамин В2). У жвачных животных он синтезируется микрофлорой преджелудков, а у моногастричных — только кишечника. Рибофлавин в печени превращается в флавинаденин-динуклеотид (ФАД) и частично в флавинмононуклеотид (ФМН). Оба соединения являются коферментами более 60 флавиновых ферментов (флавопротеинов), которые активно участвуют в тканевом дыхании, окислении амино- и оксикислот, глюкозы, альдегидов, НАДН и НАДФН.
Недостаточность рибофлавина чаще отмечают у птицы, пушных зверей, поросят, реже — у жвачных. У телят и ягнят В2-гипо-витаминоз развивается в ранний период жизни до начала функционирования преджелудков, у пушных зверей — при дефиците в рационе мяса, печени, молока, дрожжей, при хронических расстройствах пищеварения, угнетении жизнедеятельности микрофлоры антибактериальными средствами.
Содержание рибофлавина в крови телят составляет 8—16 мкг/100 мл, в печени 30—65 мкг/г, в печени поросят 30—44, кур 15—22; норок — не менее 13, песцов — не менее 15 мкг/г [2]. Объективным критерием обмена рибофлавина у птицы является содержание его в яйцах: в белке яиц кур и индюшек 2—3 мкг/г, в желтке 3—5 мкг/г, уток и гусей соответственно 1—2 и 6—7 мкг/г [2].
Содержание ФАД в крови здоровых телят составляет 8—16 мкг/100 мл, в крови больных — 2,7—6,0 мкг/100 мл. Хороший источник витамина В2 для молодняка — молозиво и молоко. Больше всего его у овцематок (около 20 мг в 1 л молозива и 4 мг в 1 л молока), меньше — у коров, коз и свиноматок (5—7 и 1,5—2,3 мг/л), меньше всего — в молоке кобыл (0,15—0,65 мг/л).
Никотиновая кислота (витамин В5). У взрослых жвачных она синтезируется микроорганизмами в преджелудках, у телят — эндогенно из аминокислоты триптофана, у свиней — в тканях из триптофана и микроорганизмами в толстом кишечнике. У собак, кошек и пушных зверей (норок, лисиц, песцов) синтез никотиновой кислоты из триптофана ограничен. У кошек фермент, отвечающий за альтернативный «нениациновый» путь превращения триптофана, довольно высокоактивен, поэтому синтез никотиновой кислоты ограничен.
Никотиновая кислота в печени превращается в активную форму — никотинамид, который, соединяясь с нуклеотидами, превращается в два кофермента — никотинамидадениндинуклеотид (НАД) и никотинамидадениндинуклеотидофосфат (НАДФ), которые являются первым звеном в цепи тканевых дыхательных ферментов. Никотиновые коферменты участвуют в обмене углеводов, жиров, аминокислот, спиртов. НАД и НАДФ входят в состав ферментов клеточного ядра, митохондрий, эндоплазматического ретику-лума, участвуют в различных реакциях.
Обмен никотиновой кислоты контролируют по ее содержанию в печени, крови и молоке [2]. В 100 г печени телят ее содержится 12,0—25,0 мг, поросят — 10—27,5, овец — 36—46; птицы — 10—20 мг; лошадей — 3,7—10,5 мг. В крови свиней содержится 3,2—7,5 мкг/мл никотиновой кислоты, овец — 3,6—13,0, собак — 3,6—6,7 мкг/мл.
Цианкобаламин (витамин В^). У взрослых жвачных при достаточном количестве в рационе кобальта и протеина он синтезируется микроорганизмами в преджелудках и толстом кишечнике. У животных с однокамерным желудком микробный синтез не удовлетворяет их потребности, поэтому свиньи, птицы, собаки и пушные звери нуждаются в дополнительном поступлении витамина с кормом. У птиц большинство микроорганизмов синтезируют цианкобаламин, наиболее интенсивно — в толстых кишках. Норки, лисицы и песцы употребляют мясные и рыбные продукты, богатые витамином В12, поэтому у них может развиваться только эндогенный В[2-гиповитаминоз.
Цианкобаламин стимулирует эритроцитопоэз, влияя на превращение фолиевой кислоты (витамин Вс) в тетрагидрофолиевую, которая ускоряет созревание эритроцитов. Дефицит витамина В[2 нарушает эту реакцию, в эритро- и нормобластах уменьшается синтез ДНК, поэтому их деление и созревание задерживаются.
Витамин В12 стимулирует превращение пропионовой кислоты в глюкозу. Вначале она превращается в метилмалонил-КоА, а затем — в сукцинил-КоА. Последняя реакция катализируется ферментом метилмалонил-КоА-изомеразой, которой необходим витамина В 12-кофермент — дезоксиаденозилкобаламин. При дефиците витамина Bi2 активность фермента снижается, что сопровождается накоплением в крови и моче метилмалоновой кислоты (ММК).
Контроль за состоянием обмена цианкобаламина проводят за его содержанием в крови, молозиве, молоке, печени и желтках яиц. В крови телят содержится 0,10—0,19 мкг/л цианкобаламина [21], жеребят — 1,5—6,5, кроликов — 30 мкг/л [3]. Уменьшение содержания витамина Bi2 коррелирует (г = —0,67) с увеличением концентрации ММК в моче до 6,2—11,0 мкмоль/л (8,23 + 1,03). Оптимальное количество ее в моче составляет 1,8—3,9 мкмоль/л (2,9 ± 6,73), при гипокобальтозе увеличивается до 8,23 + 1,03 [21].
Молозиво коров содержит в 1 л 17—50 мкг витамина Bj2, свиней — 0,5— 3,2 мкг; молоко соответственно 5—9 и 1,2—3,3 мкг/л; молоко овец — 5—9, коз — 0,18—0,8, кобыл — 0,5—2,3, крольчих — 50—60 мкг/л. Содержание витамина В12 в желтках яиц составляет не менее 8 мкг/кг. Оптимальное содержание витамина в печени 4-недельных цыплят — 450—500 мкг/кг, утят — 290—620 мкг/кг [2, 3].
10.8. ГОМЕОСТАЗ МИНЕРАЛЬНЫХ ЭЛЕМЕНТОВ
Кальций. Особых отличий в обмене и содержании кальция в сыворотке крови молодняка и взрослых животных нет. В костной ткани молодняка относительное содержание обменного кальция больше (9—11 %), чем у взрослых животных (3—5 %). В сыворотке крови молодняка кальция содержится 10—12 мг/100 мл (2,5—3 ммоль/л). У поросят возможна врожденная патология абсорбции кальция, которая обусловлена аутосомным рецессивным фактором.
Фосфор. Содержание фосфора в организме животных и соотношение его с кальцием зависят от степени физиологической зрелости молодняка. У телят соотношение между кальцием и фосфором оптимальное (1,7—1,8). Содержание неорганического фосфора в сыворотке крови молодняка выше, чем у взрослых животных: у телят — 5,5—7,5 мг/100 мл (1,78—2,42 ммоль/л), у поросят — 6,0-8,0 мг/100 мл (1,94—2,58 ммоль/л).
Уменьшение содержания неорганического фосфора в сыворотке крови наблюдается при дефиците его в рационе, недостаточном усвоении в кишечнике, гиперфункции паращитовидных желез, когда уменьшается реабсорбция фосфора в канальцах почек, а потери его с мочой увеличиваются.
Увеличение содержания неорганического фосфора — гиперфос-фатемия — развивается при уменьшении секреции паратгормона и увеличении кальцитонина (стимулируется реабсорбция фосфора в почках), передозировке холекальциферола. У людей регистрируется врожденная патология обмена фосфора.
Кобальт. Клинически здоровые телята содержат кобальта 0,478—0,654 мкмоль/л (2,8—3,85 мкг/100 мл), при дефиците — 0,194—0,357 мкмоль/л [21]. Между содержанием кобальта и витамина В[2 в крови установлена корреляционная зависимость высокого уровня (г = +0,93).
Д
инамика
содержания железа, меди и кобальта в
сыворотке крови телят до 30—40-дневного
возраста представлена в таблице 96 [32].
Железо. Входит в состав более 70 ферментов. Все соединения, содержащие железо, можно разделить на две группы: а) порфири-новые, т. е. содержащие железо в составе гема (гемоглобин, миог-лобин, цитохромы, цитохромоксидаза, каталаза, пероксидаза); б) соединения, содержащие негеминовое железо (трансферрин, ферритин, гемосидерин).
Дефицит железа (гемосидероз) — одна из наиболее распространенных патологий у молодняка сельскохозяйственных животных, особенно у поросят и телят. Для характеристики железодефицит-ной анемии используют различные показатели крови: количество гемоглобина и его содержание в одном эритроците, количество железа в сыворотке крови (анемия развивается при 70 мкг/100 мл и менее, т. е. 12,5 мкмоль/л), общую и латентную железосвязыва-ющую способность сыворотки крови (ОЖСС и ЛЖСС), содержание трансферрина (СТ) и коэффициент насыщения трансферрина железом (КНТ). Динамика некоторых перечисленных показателей приведена в таблице 97 [29]. При анемиях уменьшается концентрация сывороточного ферритина, поэтому компенсаторно увеличивается количество транспортного для железа белка — трансферрина. Вследствие уменьшения содержания железа в сыворотке крови и увеличения трансферрина уменьшается коэффициент насыщения трансферрина железом (в 3—3,5 раза), а общая желе-зосвязывающая способность сыворотки крови увеличивается, т. е. количество железа, которое может связываться с трансферрином, возрастает (у поросят до 70 мкмоль/л против 40 у здоровых) [29].
