- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
2. Приготовление индикаторов
Окраска |
|
кислотной формы |
щелочной формы |
Розовая Красная |
Оранжево-желтая Желтая |
» |
Синяя |
Бесцветная |
Красная |
Желтая |
» |
Бесцветная |
Синяя |
|
|
Индикатор |
Область перехода (интервал рН) |
Метиловый |
3,1-4,4 |
оранжевый, |
|
0,1%-ный рас- |
|
твор |
|
Метиловый |
4,4-6,2 |
красный, |
|
0,1%-ный рас- |
|
твор |
|
Лакмус |
5,0-8,0 |
(азолитмин), |
|
0,5%-ный рас- |
|
твор |
|
Фенолфталеин, |
8,0-10,0 |
0,1%-ный рас- |
|
твор |
|
Феноловый |
6,8-8,0 |
красный, |
|
0,1%-ный рас- |
|
твор |
|
Тимол фталеин, |
9,3-10,5 |
0,5%-ный рас- |
|
твор |
|
Универсальный |
2,0-10,0 |
индикатор (по |
|
Кольтгофу)* |
|
в
100 мл воды
0,1
г индикатора растворяют
в
100 мл этилового спирта
0,5
г индикатора растворяют
в
100 мл воды
0,1
г индикатора растворяют
в
100 мл этилового спирта
0,1
г индикатора растворяют в 100 мл
25%-ного водного раствора этилового
спирта
0,5
г индикатора растворяют
в
100 мл этилового спирта
Смешивают
0,1%-ные спиртовые растворы индикаторов:
диметиламиноа-зобензол 15 мл, бромтимол
синий 20 мл, метиловый красный 20 мл,
фенолфталеин 20 мл, тимол фталеин 20
мл
*
Универсальный индикатор имеет окраски:
при рН 2 (и меньше) — красно-розовую,
рН 3 — красно-оранжевую, рН 4 — оранжевую,
рН 5 — желто-оранжевую, рН 6 —
лимонно-желтую, рН 7 — желто-зеленую,
рН 8 — зеленую, рН 9 — сине-зеленую,
рН 10 (и выше) — фиолетовую.
Способы приготовления
2.5. ПРИГОТОВЛЕНИЕ БУФЕРНЫХ СМЕСЕЙ, КОЛОНОК, СИЛИКАГЕЛЬНЫХ ПЛАСТИНОК
Растворы большинства чистых химических веществ имеют неустойчивый рН, который изменяется при добавлении кислот и щелочей. Многие биохимические анализы требуют выполнения реакций в условиях определенного интервала рН, мало изменяющегося при внесении небольших количеств кислоты или щелочи. Для этой цели применяют буферные растворы, представляющие собой смеси слабых кислот с солями этих кислот или смеси слабых оснований с солями слабых оснований. Буферным действием могут обладать смеси кислых солей разной основности, например NaH2P04 + Na2HP04, где первая соль играет роль слабой кислоты, а вторая — ее соли.
Способность раствора противостоять прибавлению кислоты или щелочи называется его буферной емкостью. Выражается она числом эквивалентных масс кислоты или щелочи, которые нужно прибавить к 1 мл раствора, чтобы его рН изменился на единицу. Для большинства буферных смесей интервал рН, в котором они обладают достаточным буферным действием, не превышает 2. Чтобы расширить этот интервал, пользуются буферными смесями, состоящими из нескольких слабых кислот и их солей, подобранных с таким расчетом, чтобы там, где кончается область буферного действия одной из них, начиналась область другой. Такие буферные смеси называются универсальными.
Буферные растворы готовят согласно разработанным рецептам. Исходные растворы для буферных смесей приготавливают особенно тщательно. Так, раствор NaOH не должен содержать соды. Для этого 100 г х. ч. NaOH растворяют в 120 мл воды и сливают в цилиндр, плотно закрытый пробкой. В таком концентрированном растворе сода не растворяется и выпадает в осадок. Затем раствор осторожно декантируют и разводят до требуемой концентрации.
Буферные растворы готовят на дистиллированной воде, из которой при кипячении (в течение 30—45 мин) удален С02, и хранят в сосудах с хлоркальциевой трубкой для предохранения от доступа С02 из воздуха.
Использование сефадекса в гель-фильтрации. В ветеринарных лабораториях широко используют методы хроматографии. Для разделения и фракционирования метаболитов получил распространение метод фильтрования растворов через гель, названный «сефадекс» (Швеция) — гель-фильтрация. Сефадекс имеет вид мелких зерен, набухающих в воде. Например, для разделения полисахаридов с различной молекулярной массой рекомендуют следующие типы сефадекса.
Тип сефадекса
Молекулярная масса разделяемых полисахаридов
G—25, мелкий G—50, грубый
G-75 » G-100 »■ G-200 »
100-5000
500-10 000 1000-50 000 5000-100 000 5000-200 000
У белковых веществ диапазоны молекулярных масс шире, чем у полисахаридов.
Для использования сефадекса служит хроматографическая колонка из боросиликатного стекла с рубашкой. Вначале сефадекс смешивают с водой, полученную смесь взмучивают, вливают в колонку и дают осесть. Затем в колонку добавляют концентрированный раствор исследуемого вещества так, чтобы не взмучивался верхний слой сефадекса. Равновесие устанавливается быстро, скорость вымывания значительно выше по сравнению с обычными ионитами. Фракции контролируют спектрофотометрически или по электропроводности.
Приготовление силикагеля и пластинок для метода тонкослойной хроматографии (ТСХ). Метод ТСХ имеет ряд преимуществ перед другими методами хроматографического анализа (колоночной хроматографии и хроматографии на бумаге): вещества разделяются быстро — от нескольких минут до 2—3 ч; можно разделять малые количества вещества (0,1—0,05 мкг), а также выделять их препаративно (от 100 до 500 мг). Основан метод на сорбции растворенных веществ адсорбентом; при движении растворителя с разделяемой смесью веществ по неподвижной фазе — адсорбенту разделяемые компоненты перемещаются с различной скоростью в направлении движения растворителя. В качестве сорбентов применяют целлюлозу, AI2O3, кизельгур и др. Наибольшее применение получил си-ликагель — соединение общей формулы Si02 • ИН2О.
Адсорбционные свойства силикагеля могут быть существенно изменены добавлением кислот, оснований, солей. Силикагель, пропитанный 100%-ным раствором сульфата аммония, используют для разделения липидов и фосфолипидов, обработанный фосфатным буфером — для разделения аминокислот. Силикагель, им-прегнированный нитратом серебра, позволяет разделить отдельные молекулярные типы фосфолипидов в зависимости от степени ненасыщенности образующих их жирных кислот.
Для разделения липидов на отдельные фракции применяют марки силикагеля G, Н, DC, L, КСК гранулированный и др.
Подготовка силикагеля марки КСК. При отсутствии специально предназначенных для тонкослойной хроматографии силикагелей рекомендуют продажный гранулированный или кусковой силикагель марки КСК или ШСК. Для этого кусковой силикагель измельчают на шаровой мельнице и пропускают с водой через сито. Через 30 мин воду удаляют декантацией, а осадок промывают сначала горячей водой, затем горячим этанолом, опять водой и концентрированной соляной кислотой до приобретения фильтратом светло-желтой окраски. Отмывают водой до отрицательной реакции на ионы хлора (помутнение 1—0,1%-ного раствора серебра нитрата). На ионы железа проверяют с роданидом аммо-нидом (калия, натрия). Отмытый силикагель сушат при 120—130 °С в течение 5—6 ч и просеивают через сита с размером ячеек 150—200 мкм. Хранят в банках с притертыми пробками.
Приготовление ТСХ-пластинок с закрепленным слоем сорбента. При отсутствии в лаборатории специального аппликатора для нанесения слоя сорбента на хроматографи-ческие пластинки последние можно изготовить следующим образом. Просеянный через сито с отверстиями диаметром 150—200 мкм си-ликагель тщательно перемешивают с 6 % (по массе) чистого медицинского гипса или 1 % растворимого крахмала и наносят смесь на поверхность матированных с помощью наждачного порошка обезжиренных стеклянных фотопластинок (13 х 18 см). Толщина слоя сорбента, образуемого на пластинке, обеспечивается при разравнивании его стеклянной трубкой (диаметром 1,5—2 см), на которую на расстоянии 12 см друг от друга наматывают по нескольку витков проволоки диаметром 0,5 мм. Такие кольца служат ограничителями размера наносимого слоя, а также гарантируют его постоянную толщину (0,5 мм). Пластинки с нанесенным слоем сорбента размещают на строго горизонтальной поверхности и опрыскивают из пульверизатора дистиллированной водой до полного насыщения слоя. После подсушивания на воздухе (избегать пыли) пластинки помещают в сушильный шкаф и активируют при 105—110 "С в течение 1 ч или при 140 °С в течение 0,5 ч. Приготовленные таким образом пластинки хранят в эксикаторах над поглотителем (кальция хлорид). При длительном хранении пластинок их активность следует периодически проверять.
Если пластинки готовят для экспресс-метода, сорбент можно наносить на пластинку в виде жидкой взвеси силикагеля с гипсом или крахмалом в воде с помощью пипетки. Более или менее однородные по свойствам пластинки получают при нанесении одинаковых объемов такой взвеси на каждую пластинку. Отклонения от рекомендованных марок силикагелей и режимов их обработки допускаются в исключительных случаях.
2.6. ПРАВИЛА БЕЗОПАСНОСТИ ПРИ РАБОТЕ С РЕАКТИВАМИ, ПРАВИЛА ИХ ХРАНЕНИЯ
При работе в лаборатории особое внимание обращают на технику безопасности. При несоблюдении элементарных правил ее при проведении лабораторных работ, незнании свойств материалов, с которыми приходится иметь дело, неумелом обращении с реактивами и приборами могут происходить травмы. При работе необходимо придерживаться общих правил:
в лаборатории следует соблюдать чистоту и порядок; изучить по справочникам используемые в лаборатории вещества, обращая особое внимание на огнеопасность, ядовитость, возможность образования взрывчатых смесей с другими веществами;
анализы, связанные с применением концентрированных кислот и щелочей, а также с выделением вредных, ядовитых, огнеопасных газов, паров, с образованием мелких кусочков веществ, разбрызгиванием жидкости, надо выполнять в вытяжном шкафу, а в некоторых случаях — в защитных очках, фартуках и нарукавниках;
работу с легковоспламеняющимися и взрывоопасными веществами (бензин, бензол, сероуглерод, ацетон, диэтиловый эфир и др.) проводить в вытяжном шкафу, вдали от огня и включенных нагревательных приборов (если нужно использовать водяную баню, то ее предварительно нагревают в другом месте, применяют также электроплитку со скрытыми нагревательными элементами); хранить их в толстостенных склянках, железных ящиках, выложенных асбестом; общий запас огнеопасных жидкостей в рабочем помещении лаборатории не должен превышать 2—3 л;
концентрированные и ядовитые жидкости не набирать в пипетку ртом, а пользоваться резиновой грушей или пипеткой с баллоном; при переливании их из больших бутылей в меньшие сосуды применять сифоны;
не бросать в раковину бумагу, твердые вещества, не выливать в нее остатки кислот, щелочей, огнеопасных и сильнопахнущих жидкостей; собирать их в специальные толстостенные, плотнозакры-вающиеся склянки;
не нагревать закупоренные сосуды и аппараты, кроме специально для этого предназначенных;
соблюдать особую осторожность при работе со сжатыми газами (водородом, кислородом, хлором, метаном, ацетиленом, аммиаком и др.); предохранять баллоны от падения, ударов, толчков, нагревания; перекатывать баллоны осторожно, вручную, в наклонном положении;
при работе с вакуумом надевать защитные очки; при проведении работ в вакууме не применять плоскодонных колб — они будут раздавлены;
все химические реактивы хранить только в соответствующей посуде с этикетками и ясными надписями, а разлагающиеся на свету реактивы (AgN03 и др.) — в темной посуде;
соблюдать крайнюю осторожность при вскрытии склянок с реактивами, остерегаться повреждения склянок; если притертая стеклянная пробка сидит плотно, то горлышко сосуда обертывают смоченным горячей водой полотенцем и осторожно постукивают по верхней части пробки деревянным предметом, извлекая ее; можно склянку перевернуть вверх дном и опустить горлышком в сосуд с водой или разбавленной соляной кислотой; стеклянные краны, которые «заедает», открывают теми же приемами или отмачивают несколько часов в 5%-ном мыльном растворе.
Концентрированные растворы кислот и щелочей для постоянного пользования нужно держать в небольших бутылях и склянках вместимостью 1—2 л. Под такую посуду подкладывают кусок стекла или подставку из пластмассы, стойкой к кислотам и щелочам.
При разбавлении кислот, особенно серной и азотной, нужно добавлять кислоту к воде, иначе произойдет вскипание воды и разбрызгивание кислоты.
При переливании дымящих кислот, таких, как концентрированная соляная или дымящая азотная, надевают противогаз, респиратор или обвязывают рот и нос полотенцем, смоченным в растворе соды. Применение предохранительных очков при этом обязательно. Работу лучше проводить под тягой. Если кислота прольется на пол, ее тут же засыпают песком, собирают его и выносят из помещения. Облитое место обмывают раствором соды или аммиака.
Большие бутыли с кислотами и щелочами лучше хранить в стояках, тогда облегчается переливание из них и достигается ббльшая безопасность. Большие бутыли с кислотами, щелочами и другими агрессивными жидкостями хранят только в плетеных корзинах. Эти бутыли нельзя ставить прямо на пол, особенно каменный. На каждой бутыли должна быть этикетка: иногда к горлышку бутыли (или к корзине) прикрепляют фанерную дощечку с надписью о содержимом. Работу с большими бутылями (переноска, переливание и др.) нельзя выполнять одному.
Очень осторожного обращения требуют щелочи — гидроксиды натрия и калия, концентрированные растворы аммиака. Куски твердой щелочи нельзя брать руками, нужно надевать резиновые перчатки или пользоваться тигельными щипцами, которые после употребления тщательно обмывают. При разбавлении кусковой щелочи надевают резиновые перчатки и предохранительные очки. Взвешивают твердые щелочи в стеклянной или фарфоровой таре.
Растворение NaOH и КОН в воде вызывает сильное разогревание, поэтому щелочи растворяют не в стеклянной посуде, а в фарфоровых стаканах или чашках. Сначала готовят концентрированные растворы (32—40%-ные, плотностью 1,35—1,45 г/см ), дают им отстояться (иногда несколько дней), затем раствор с осадка осторожно при помощи сифона переливают в другую посуду.
Хранят растворы щелочей и твердые щелочи в хорошо закрытой посуде, бутыли со щелочами нельзя закрывать стеклянными притертыми пробками. Концентрированные растворы щелочей сильно выщелачивают стекло бутылей, поэтому внутреннюю часть бутыли рекомендуют покрыть парафином или смесью церезина и вазелина, или сплавом парафина с полиэтиленом. Для этого несколько кусков парафина помещают внутрь бутыли и нагревают ее в сушильном шкафу или над электрической плитой (осторожно) до 60—80 "С. Когда парафин расплавится, бутыль поворачивают и распределяют разогретую массу тонким слоем по всей внутренней поверхности.
Работа с концентрированным раствором аммиака требует большого внимания и осторожности. Поступает он в лаборатории в виде 25%-ного водного раствора. Переливать его из крупных бутылей в мелкие нужно обязательно в противогазе, на открытом воздухе или под тягой.
2.7. ПОМОЩЬ ПРИ ОЖОГАХ И ОТРАВЛЕНИИ
При ожогах огнем делают длительную примочку раствором пер-манганата калия или этиловым спиртом, а затем обожженное место покрывают специальной эмульсией. При ожогах кислотами кожи или глаз обожженное место промывают большим количеством воды, а затем разбавленным раствором гидрокарбоната натрия (ЫаНСОз). При ожогах едкими щелочами пораженное место хорошо обмывают проточной водой, затем 1%-ной уксусной кислотой; особенно опасны щелочи для роговицы глаза. При работе с твердыми щелочами обязательно надевают очки. Если на кожу попадет разъедающее органическое вещество, смывать водой его бесполезно, нужно быстро промыть большим количеством органического растворителя (спиртом, бензолом); причем избегают образования на коже концентрированных растворов.
В случае отравления хлором или парами брома следует длительно вдыхать спирт, затем выйти на свежий воздух.
При сильных ранениях, ожогах и отравлениях после оказания первой помощи пострадавшего немедленно направляют в поликлинику.
Медикаменты и перевязочные средства всегда должны находиться в лабораторной аптечке. Растворы гидрокарбоната натрия, аммиака и уксусной кислоты нужно держать на каждом рабочем столе.
Источники: 13, 15, 22, 23, 43, 46, 58, 61, 62.
