Синегнойная палочка

Палочка сине-зеленого гноя (Pseudomonas aerugino­sa) широко распространена во внешней среде. Она явля­ется постоянным обитателем кишечника человека и жи­вотных, обнаруживается на коже, слизистых оболочках, различных предметах обихода, в почве, воде. Это неболь­шая подвижная грамотрицательная палочка. Спор и кап­сул не образует. Факультативный аэроб. Растет на прос­тых питательных средах при широком диапазоне температур: от 5 до 42°С и pH 4,5—9,0. Оптимальная тем­пература роста 37°С, pH 7,2—7,5. В жидкой среде образу­ет помутнение и пленку, на мясо-пептонном агаре — коло­нии средней величины и крупные (2—5 мм), круглые, по­лупрозрачные, голубовато-серые с перламутровым оттен­ком. Характерным признаком Ps. aeruginosa является пигментообразование и ароматообразование, благодаря которому питательные среды при росте микроба окраши­ваются в сине-зеленый цвет и имеют характерный запах жасмина.

Пигмент синегнойной палочки — пиоцианин — рас­творим в воде, принимает участие в дыхании микроба и обладает высокой антибактериальной активностью, од­нако из-за высокой токсичности в лечебной практике не используется.

Синегнойная палочка ферментирует только глюкозу с образованием кислоты. Протеолитическая активность вы­сокая: разжижает желатин и свернутую сыворотку, свер­тывает молоко, вызывает гемолиз эритроцитов. Многие штаммы продуцируют вещества, относящиеся к группе бактериоцинов — пиоцины. Описано 25 типов О-антигена Ps. aeruginosa и 8 групп Н-антигенов.

Синегнойная палочка — антагонист многих грамотри- цательных и грамположительных бактерий. Микроб до­вольно устойчив к различным внешним воздействиям: в пыли помещений выживает 2 нед, выдерживает ультра­фиолетовое облучение. При 60°С гибнет в течение 15 мин. Устойчив к большинству антибиотиков. Продуцирует экзотоксин.

Из лабораторных животных наиболее чувствительны к синегнойной палочке кролики, белые мыши и морские свинки. Внутривенное введение культуры вызывает сеп- тикопиемию и смерть в течение 24—48 ч.

Синегнойная палочка относится к гноеродным условно патогенным микробам. В последние годы ее роль в пато­логии человека значительно возросла: она вызывает са­мые разнообразные гнойные заболевания, особенно у лиц с пониженной сопротивляемостью инфекции: нагноения ран, остеомиелиты, отиты, пневмонию, легочные абсцес­сы, а также пищевые отравления, эндокардиты, сепсис и др.

Основной метод лабораторной диагностики — микро­биологический, при котором способность к пигментообра- зованию — важный диагностический признак.

Для лечения применяют полимиксин, неомицин, гента- мицин и другие антибиотики.

В группу коринебактерий входят бактерии, имеющие булавовидные утолщения на концах: возбудитель дифте­рии (от греч. diphthera — кожа, пленка), дифтероиды (не­патогенные коринебактерии), ложнодифтерийные бакте­рии (палочка Гоффмана).

Возбудитель дифтерии

Возбудитель дифтерии — Corynebacterium diphthe- riae — открыт в 1883—1884 гг. Клебсом и Леффлером.

Морфология и биологические свойства. Коринебакте- терии дифтерии — слегка изогнутые небольшие тонкие па­лочки размером 0,3—0,4X4—5 мкм, с небольшими була­вовидными утолщениями на концах, в которых находятся скопления волютина. Спор и капсул не образуют. Харак­терными признаками этих бактерий являются полимор­физм (наличие, помимо типичных палочек, длинных, ко­ротких, ветвящихся форм, грушевидных), метахромазия (неравномерное окрашивание тела в связи с более интен­сивно окрашивающимися зернами волютина) и располо­жение палочек в мазке под углом друг к другу, в виде растопыренных пальцев, горсти булавок (рис. 36, 2). Грамположительны. Зерна волютина хорошо выявляются при окраске по Нейссеру: тело бактерий окрашивается в желтый, а зерна волютина — в темно-синий цвет. В носо­глотке часто обнаруживаются ложнодифтерийные палоч­ки Гоффмана, более короткие и толстые, чем дифтерий­ные, и располагающиеся в мазках параллельно друг дру­гу в виде частокола: зерна волютина у них обнаружива­ются редко и располагаются беспорядочно.

Возбудитель дифтерии — факультативный аэроб. Тем­пературный оптимум 37°С, pH 7,6—7,8. На простых пита­тельных средах растет плохо. Для выращивания исполь­зуют элективные сывороточные среды (Ру и Леффлера) и дифференциально-диагностические среды с теллури- том калия (среда Клауберг II, индикаторная, сывороточ- но-теллуритовый агар Тинсдаля и др.). Дифтерийные ми­кробы при росте на дифференциально-диагностических средах восстанавливают металлический теллур из тел- лурита калия, поэтому колонии их темного цвета. Коло­нии на средах Ру и Леффлера выпуклые, блестящие, их рост напоминает шагреневую кожу. На бульоне Мартена характерен рост в виде пленки.

По культуральным, биохимическими и другим свойст­вам различают три типа дифтерийных палозек. gravis, mitis и intermedius. На теллуритовых средах тип gravis образует колонии плоские, крупные, с радиальной исчер- ченностью и зубчатыми краями, серовато-черного цвета. Колонии типа mitis более мелкие, выпуклые, блестящие, гладкие, черного цвета. Тип intermedius занимает проме­жуточное положение. Биохимические свойства дифтерий­ных бактерий позволяют отличить их от непатогенных представителей рода Corynebacterium, а также диффе­ренцировать на типы (табл. 13).

Таблица 13

Дифференциальные признаки бактерий рода Corynebacterium

Название	Глюкоза	Сахароза	Крахмал	Уреаза	Цистиназа (проба Пизу)	Токсигенность
Коринебактерии диф­	+	__	+			+(gravis)
терии			(gravis)	—	++++
						—(mitis)
Дифтероиды	+	+	—(mitis)	±	±	—
Палочка Гоффмана	—	—	—	+	—	—

Дифтерийные бактерии ферментируют глюкозу, маль­тозу, галактозу до кислоты, не изменяют сахарозу, лакто­зу, маннит, не разлагают мочевину (проба на уреазу), продуцируют фермент цистиназу (проба Пизу). Бактерии типа gravis ферментируют крахмал и образуют экзоток­син, типа mitis не расщепляют крахмал и нетоксигенны.

Токсинообразование. Дифтерийные бактерии образу­ют сильный экзотоксин, который при введении в орга­низм избирательно поражает сердечную мышцу, надпо­чечники и периферическую нервную систему. Силу ток­сина определяют на морских свинках и измеряют мини­мальной смертельной дозой (Dim), убивающей животное в течение 3—4 дней.

Дифтерийный токсин малоустойчив, легко разрушает­ся при 60°С, от действия солнечного света и различных хи­

мических веществ. Под действием 0,3—0,4% формалина и выдерживания при 40°С в течение месяца он превращает­ся в неядовитое соединение — анатоксин. Анатоксин со­храняет иммуногенные свойства и его используют для иммунизации людей.

Устойчивость. Дифтерийные бактерии довольно устой­чивы к низкой температуре. В высушенной дифтерийной пленке остаются жизнеспособными 3—4 мес, на различ­ных предметах и одежде сохраняются много дней. Чувст­вительны к действию высоких температур: при кипячении погибают мгновенно, при 60°С— в течение 10 мин. Быст­ро гибнут при действии прямого солнечного света, дезин­фицирующих растворов: 3—5% раствор карболовой кис­лоты убивает их в течение минуты.

Патогенность. Животные дифтерией не болеют. В экс­периментальных условиях наиболее чувствительны к за­ражению морские свинки и кролики. При подкожном введении морским свинкам культуры или токсина разви­вается картина токсикоинфекции, на месте инъекции воз­никает воспаление, а затем некроз. На вскрытии обнару­живают гиперемию внутренних органов, увеличение и гиперемию надпочечников, скопление серозного и сероз­но-геморрагического экссудата в полостях плевры, брю­шины, околосердечной оболочки.

Патогенез и клиника. Входными воротами дифтерий­ных микробов являются слизистые оболочки носоглотки, иногда глаз, половых органов (у девочек), кожа и раны. Инкубационный период равен 3—10 дням. Микроб лока­лизуется на месте входных ворот, где возникает местное фибринозное воспаление и образуются дифтеритические пленки. Они серовато-желтого цвета, тесно спаяны с под- слизистым слоем. Иногда процесс со слизистой глотки рас­пространяется на гортань и бронхи, что сопровождается отеком, сужением гортани и может привести к асфиксии. Токсин дифтерийной палочки, всасываясь в кровь, обус­ловливает тяжелую общую интоксикацию организма, из­бирательно поражая сердечную мышцу, надпочечники, нервные клетки. Смерть может наступить от удушья или паралича сердца. Наиболее тяжелые клинические фор­мы дифтерии вызывает тип gravis, а более легкие — mitis.

Иммунитет. После перенесенной инфекции стойкий, хотя возможны повторные заболевания. Формирование его связано с накоплением в крови антитоксина. Антиток­син к дифтерийному токсину обнаруживают у детей до 6-месячного возраста в результате передачи его с кровью матери через плаценту. У взрослых он также накаплива­ется в результате постоянной «бытовой» иммунизации. Лица, у которых в крови содержание антитоксина до­стигает ‘/зо АЕ на 1 мл, невосприимчивы к дифтерии. На­иболее восприимчивы к этой инфекции дети от 1 года до 6—7 лет. О состоянии иммунитета к дифтерии можно су­дить по реакции Шика. Для этого во внутреннюю поверх­ность предплечья внутрикожно вводят 'До Dim дифтерий­ного токсина. Токсин перед введением разводят таким об­разом, чтобы данная доза содержалась в объеме 0,2 мл. При отсутствии в крови антитоксина на месте введения токсина через 2—3 дня появляются краснота и припух­лость диаметром до 2 см. Если же ребенок невосприим­чив к дифтерии, реакция будет отрицательной вследствие нейтрализации введенного токсина содержащимся в кро­ви антитоксином.

Микробиологическая диагностика. Лабораторное ис­следование производится с целью ранней диагностики за­болевания и выявления бактерионосителей среди здоро­вых лиц. Материалом для исследования служат дифтери- тическая пленка, слизь из носа и глотки. Берут материал двумя стерильными ватными тампонами. Один тампон использую'Гдля посева, а другим делают мазки, окраши­вают их по Граму и Нейссеру и микроскопируют. В маз­ках, сделанных тампоном, дифтерийные микробы неред­ко совсем не обнаруживаются или встречаются единич­ные палочки. Поэтому основным методом лабораторной диагностики является микробиологический. Посев произ­водят на чашку с одной из дифференциально-диагности­ческих сред. Через 24—48 ч инкубации в термостате при 37°С просматривают посевы. Из подозрительных колоний делают мазки, окрашивают метиленовым синим. Однако в мазках из колоний на дифференциально-диагностических средах дифтерийные палочки недостаточно типичны по морфологии. Для выделения чистой культуры часть от­дельно лежащей подозрительной колонии засевают на скошенный сывороточный агар или свернутую сыворотку (среду Ру). Вторую половину засевают в виде «бляшки» на поверхность среды для определения токсигенности и, не прожигая петли, производят посев уколом в пробирку со столбиком агара с цистином (проба Пизу) для выяв­ления фермента цистиназы.